摘要 | 第3-4页 |
ABSTRACT | 第4-5页 |
前言 | 第9-10页 |
第一章 文献综述 | 第10-22页 |
1.1 分子印迹与生物印迹酶 | 第10-15页 |
1.1.1 分子印迹原理及制备方法 | 第10-12页 |
1.1.2 分子印迹技术的应用领域 | 第12-13页 |
1.1.3 生物印迹酶原理及制备方法 | 第13页 |
1.1.4 影响生物印迹酶的因素 | 第13-14页 |
1.1.5 生物印迹酶的应用 | 第14-15页 |
1.2 生物催化制备手性化合物研究进展 | 第15-17页 |
1.2.1 手性化合物概述 | 第15-16页 |
1.2.2 生物催化在手性化合物拆分中的应用 | 第16页 |
1.2.3 脂肪酶不对称拆分 1-苯乙醇 | 第16-17页 |
1.3 纳米级生物催化剂 | 第17-20页 |
1.3.1 纳米级生物催化剂制备方法 | 第18-19页 |
1.3.2 单酶纳米颗粒 | 第19-20页 |
1.4 本文主要研究内容 | 第20-22页 |
第二章 生物印迹酶的制备及性质研究 | 第22-36页 |
2.1 引言 | 第22页 |
2.2 实验材料和方法 | 第22-25页 |
2.2.1 实验材料和仪器 | 第22-23页 |
2.2.2 实验方法 | 第23-25页 |
2.3 结果与讨论 | 第25-35页 |
2.3.1 生物印迹酶的制备 | 第25-27页 |
2.3.2 醇类化合物作为印迹模板 | 第27-28页 |
2.3.3 底物类似物作为印迹模板 | 第28-31页 |
2.3.4 印迹过程中 pH 的影响 | 第31-32页 |
2.3.5 生物印迹酶的形貌表征 | 第32-33页 |
2.3.6 生物印迹酶的二级结构 | 第33-35页 |
2.4 本章小结 | 第35-36页 |
第三章 生物印迹酶在 1-苯乙醇手性拆分中的应用 | 第36-45页 |
3.1 引言 | 第36页 |
3.2 实验材料和方法 | 第36-38页 |
3.2.1 实验材料和仪器 | 第36-37页 |
3.2.2 实验方法 | 第37-38页 |
3.3 结果与讨论 | 第38-43页 |
3.3.1 有机溶剂对 1-苯乙醇拆分效果的影响 | 第38-40页 |
3.3.2 温度对 1-苯乙醇拆分效果的影响 | 第40-41页 |
3.3.3 底物摩尔比对 1-苯乙醇拆分效果的影响 | 第41-42页 |
3.3.4 生物印迹酶加入量对 1-苯乙醇拆分效果的影响 | 第42-43页 |
3.3.5 生物印迹酶在 1-苯乙醇拆分中的重复利用性 | 第43页 |
3.4 本章小结 | 第43-45页 |
第四章 生物印迹酶纳米微囊的制备及性质研究 | 第45-61页 |
4.1 引言 | 第45-46页 |
4.2 实验材料和方法 | 第46-49页 |
4.2.1 实验材料和仪器 | 第46-47页 |
4.2.2 实验方法 | 第47-49页 |
4.3 结果与讨论 | 第49-60页 |
4.3.1 生物印迹酶纳米微囊的制备原理及工艺流程 | 第49页 |
4.3.2 天然脂肪酶纳米微囊的制备工艺优化 | 第49-53页 |
4.3.3 生物印迹酶纳米微囊在 1-苯乙醇拆分中的应用 | 第53-55页 |
4.3.4 生物印迹酶纳米微囊重复利用性 | 第55页 |
4.3.5 生物印迹酶纳米微囊形貌表征 | 第55-58页 |
4.3.6 生物印迹酶纳米微囊二级结构表征 | 第58-60页 |
4.4 本章小结 | 第60-61页 |
第五章 生物印迹酶单酶纳米凝胶制备初探 | 第61-70页 |
5.1 引言 | 第61页 |
5.2 实验材料和方法 | 第61-63页 |
5.2.1 实验材料和仪器 | 第61-62页 |
5.2.2 实验方法 | 第62-63页 |
5.3 结果与讨论 | 第63-69页 |
5.3.1 生物印迹酶单酶纳米凝胶的制备原理 | 第63-64页 |
5.3.2 NAS 浓度对脂肪酶表面修饰度的影响 | 第64-65页 |
5.3.3 pH 对印迹酶单酶纳米凝胶活性的影响 | 第65-66页 |
5.3.4 生物印迹酶单酶纳米凝胶在 1-苯乙醇拆分中的应用 | 第66-67页 |
5.3.5 生物印迹酶单酶纳米凝胶形貌表征 | 第67-69页 |
5.4 本章小结 | 第69-70页 |
第六章 结论与展望 | 第70-74页 |
6.1 结论 | 第70-71页 |
6.2 创新点 | 第71页 |
6.3 展望 | 第71-73页 |
附表 | 第73-74页 |
参考文献 | 第74-83页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第83-84页 |
致谢 | 第84页 |