抗菌肽CGA-N12双重抗念珠菌特性研究
| 摘要 | 第5-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第一章 前言 | 第10-19页 |
| 1.1 念珠菌病 | 第10页 |
| 1.2 抗菌肽 | 第10-14页 |
| 1.2.1 抗真菌肽膜活性作用机制 | 第11-13页 |
| 1.2.2 抗菌肽(AMP)与细胞凋亡 | 第13-14页 |
| 1.3 嗜铬粒蛋白A研究进展 | 第14-18页 |
| 1.3.1 嗜铬粒蛋白研究进展 | 第14-17页 |
| 1.3.2 抗菌肽CGA-N12的发现及研究现状 | 第17-18页 |
| 1.4 选题意义 | 第18-19页 |
| 第二章 CGA-N12细胞内作用机制 | 第19-38页 |
| 2.1 实验材料 | 第19-23页 |
| 2.1.1 抗菌肽CGA-N12 | 第19页 |
| 2.1.2 实验菌株 | 第19页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第19-20页 |
| 2.1.4 主要仪器 | 第20-21页 |
| 2.1.5 主要溶液配置 | 第21-23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-28页 |
| 2.2.1 细胞膜去极化检测 | 第23页 |
| 2.2.2 CGA-N12细胞内定位观察 | 第23-24页 |
| 2.2.3 细胞内钙离子浓度检测 | 第24页 |
| 2.2.4 活性氧(ROS)检测 | 第24-25页 |
| 2.2.5 线粒体膜电位检测 | 第25页 |
| 2.2.6 Cytc的检测 | 第25-27页 |
| 2.2.7 细胞核固缩检测 | 第27页 |
| 2.2.8 染色体DNA片段化检测 | 第27-28页 |
| 2.2.9 Metacaspase活性检测 | 第28页 |
| 2.3 结果与分析 | 第28-38页 |
| 2.3.1 细胞膜去极化 | 第28-29页 |
| 2.3.2 CGA-N12在细胞内的定位 | 第29-30页 |
| 2.3.3 Ca~(2+)吸收 | 第30-31页 |
| 2.3.4 细胞内活性氧(ROS)聚集 | 第31-32页 |
| 2.3.5 线粒体膜电位耗散 | 第32-33页 |
| 2.3.6 Cytc释放 | 第33-35页 |
| 2.3.7 染色体核固缩和DNA片段化 | 第35-36页 |
| 2.3.8 Metacaspase活性升高 | 第36-38页 |
| 第三章 CGA-N12膜作用机制 | 第38-50页 |
| 3.1 实验材料 | 第38-40页 |
| 3.1.1 抗菌肽CGA-N12 | 第38页 |
| 3.1.2 脂质体 | 第38页 |
| 3.1.3 主要试剂 | 第38页 |
| 3.1.4 主要仪器 | 第38-39页 |
| 3.1.5 主要溶液配置 | 第39-40页 |
| 3.2 实验方法 | 第40-44页 |
| 3.2.1 膜完整性检测 | 第40页 |
| 3.2.2 CGA-N12 诱导膜通道实验 | 第40-44页 |
| 3.3 结果与分析 | 第44-50页 |
| 3.3.1 膜完整性 | 第44-45页 |
| 3.3.2 CGA-N12 对真菌模型膜的影响 | 第45-47页 |
| 3.3.3 CGA-N12 诱导氯离子渗漏 | 第47页 |
| 3.3.4 CAG-N12 质子渗透性影响 | 第47-49页 |
| 3.3.5 CGA-N12 诱导离子通道直径 | 第49-50页 |
| 第四章 讨论 | 第50-54页 |
| 第五章 结论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-72页 |
| 致谢 | 第72-74页 |
| 个人简历 | 第74页 |
