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一个棉花蔗糖合酶基因的克隆、鉴定与功能研究

摘要第8-10页
ABSTRACT第10-12页
本文所用主要缩略词第13-15页
第一部分 文献综述第15-47页
    第一章 棉纤维纤维素合成研究进展第15-29页
        1 棉纤维不同发育阶段纤维素合成的特点第15-19页
            1.1 纤维的分化和起始期第16页
            1.2 细胞迅速伸长期第16-17页
            1.3 次生壁合成期第17-18页
            1.4 脱水成熟期第18-19页
        2 棉纤维纤维素的生物合成分子过程第19-25页
            2.1 纤维素合成的场所第19-20页
            2.2 纤维素合成的前体及来源第20-21页
            2.3 纤维素合成中的碳代谢第21-25页
        3 棉纤维纤维素合成基因的解析第25-29页
    第二章 植物蔗糖合酶研究进展第29-45页
        1 蔗糖合成和降解过程的关键酶第29-32页
            1.1 蔗糖磷酸合酶第30-31页
            1.2 转化酶第31页
            1.3 蔗糖合酶第31-32页
        2 蔗糖合酶基因及其蛋白的结构特征第32-34页
        3 蔗糖合酶的定位与表达第34-36页
        4 糖类对蔗糖合酶基因表达和调控的影响第36-37页
        5 氧浓度和其他环境因子的调控第37-38页
        6 蔗糖合酶翻译前磷酸化的作用第38-40页
            6.1 蔗糖合酶磷酸化的早期证据第38-39页
            6.2 蔗糖合酶磷酸化的生理意义第39-40页
        7 膜蔗糖合酶和细胞壁生物合成的关系第40-45页
    本研究的目的和意义第45-47页
第二部分 研究报告第47-135页
    第三章 棉花蔗糖合酶基因GhSUSA1的克隆和特征分析第47-83页
        1 材料与方法第48-63页
            1.1 原始片段第48-49页
            1.2 植物材料第49页
            1.3 DNA的提取第49-51页
            1.4 棉花蔗糖合酶基因GhSUSA1全长序列的获得第51-54页
                1.4.1 引物设计第51-52页
                1.4.2 反应体系与程序第52-53页
                1.4.3 感受态细胞的制备及大肠杆菌的转化第53页
                1.4.4 片段回收、亚克隆与测序第53-54页
            1.5 序列分析第54-55页
            1.6 RT-PCR验证第55-59页
                1.6.1 RNA的提取第55-57页
                1.6.2 总RNA的DNaseⅠ消化第57页
                1.6.3 cDNA第一链的合成第57-58页
                1.6.4 RT-PCR第58页
                1.6.5 Q-PCR第58-59页
            1.7 Southern杂交分析第59-62页
                1.7.1 基因组DNA的酶切第59-60页
                1.7.2 试剂及其配制第60页
                1.7.3 Southern印迹第60-61页
                1.7.4 DIG标记探针第61页
                1.7.5 杂交第61-62页
                1.7.6 洗膜与显色第62页
            1.8 亚细胞定位第62-63页
        2 结果和分析第63-79页
            2.1 GhSUSA1基因全长基因组序列的获得第63-66页
                2.1.1 5'和3'TAIL步移结果与验证第63-65页
                2.1.2 两个二倍体中全长基因组序列的获得与比较第65-66页
            2.2 GhSUSA1基因的基因组结构分析第66-67页
            2.3 GhSUSA1基因全长cDNA序列的获得和序列分析第67-72页
                2.3.1 陆地棉总RNA的质量分析第67-68页
                2.3.2 GhSUSA1克隆的序列鉴定与基本信息第68-70页
                2.3.3 GhSUSA1氨基酸序列分析第70-72页
            2.4 GhSUSA1的组织表达分析第72-76页
                2.4.1 GhSUSA1在陆地棉不同组织中的表达分析第72-73页
                2.4.2 GhSUSA1在纤维发育起始阶段的表达特征第73-74页
                2.4.3 GhSUSA1在纤维伸长和次生壁加厚阶段的表达特征第74-76页
            2.5 GhSUSA1在陆地棉基因组中的拷贝数分析第76-77页
            2.6 GhSUSA1在洋葱表皮细胞中的定位分析第77页
            2.7 GhSUSA1的遗传进化分析第77-79页
        3 讨论第79-83页
            3.1 TAIL-PCR在棉花基因组中步移的效率问题第79-80页
            3.2 GhSUSA1基因在棉属中保持高度保守性第80页
            3.3 棉花中不同类型蔗糖合酶基因的比较第80-83页
    第四章 GhSUSA1基因在棉花发育过程中的功能研究第83-135页
        1 材料与方法第84-100页
            1.1 植物材料第84页
            1.2 菌株和质粒第84页
            1.3 培养基第84-86页
                1.3.1 细菌培养基第84-85页
                1.3.2 棉花组织培养培养基第85-86页
            1.4 表达载体的构建第86-88页
                1.4.1 原核表达载体构建第86-87页
                1.4.2 植物表达载体构建第87-88页
            1.5 原核表达与蛋白纯化第88-91页
                1.5.1 基因在大肠杆菌中的原核表达第88-90页
                1.5.2 目的蛋白纯化第90页
                1.5.3 目的蛋白复性浓缩第90页
                1.5.4 目的蛋白的Western印迹检测第90-91页
            1.6 植物表达载体的农杆菌转化第91-93页
                1.6.1 大肠杆菌质粒DNA的提取第91页
                1.6.2 农杆菌感受态的制备及转化第91-92页
                1.6.3 农杆菌质粒的提取第92页
                1.6.4 农杆菌转化子的PCR检测第92-93页
            1.7 农杆菌介导的棉花遗传转化第93-94页
                1.7.1 无菌苗制备第93页
                1.7.2 农杆菌培养第93页
                1.7.3 农杆菌侵染和共培养第93页
                1.7.4 诱导愈伤组织第93-94页
                1.7.5 诱导胚性愈伤组织第94页
                1.7.6 胚性愈伤组织的分化和植株再生第94页
                1.7.7 再生植株的嫁接第94页
            1.8 再生植株的检测第94-96页
                1.8.1 PCR检测第94-95页
                1.8.2 卡那霉素检测第95-96页
                1.8.3 GUS检测第96页
            1.9 转基因植株拷贝数分析第96-97页
            1.10 转基因植株表达分析第97页
            1.11 蔗糖合酶酶活测定第97-98页
            1.12 单糖及寡糖含量测定第98页
            1.13 纤维素含量测定第98页
            1.14 淀粉含量测定第98-99页
            1.15 转基因株系纤维品质测定第99-100页
        2 结果与分析第100-130页
            2.1 GhSUSA1蛋白是有功能的活性蛋白第100-102页
                2.1.1 pET-30a(+)-GhSUSA1融合载体的验证第100-101页
                2.1.2 GhSUSA1蛋白的纯化和活性鉴定第101-102页
            2.2 GhSUSA1的抑制表达在棉花中产生的影响第102-118页
                2.2.1 GhSUSA1反义植物表达载体验证第102-103页
                2.2.2 GhSUSA1反义转基因植株的获得第103-105页
                2.2.3 GhSUSA1反义转基因植株的PCR检测和纯系植株的获得第105-106页
                2.2.4 GhSUSA1反义转基因纯合株系的Southern杂交分析第106-107页
                2.2.5 GhSUSA1的抑制表达对棉纤维品质的影响第107-112页
                2.2.6 GhSUSA1的抑制表达影响棉花库强度和胚珠发育第112-115页
                2.2.7 纤维和胚珠发育过程三种糖含量动态变化第115-118页
            2.3 GhSUSA1在棉花中过量表达的初步验证第118-127页
                2.3.1 GhSUSA1正义植物表达载体验证第118-119页
                2.3.2 GhSUSA1正义转基因植株的获得第119-120页
                2.3.3 GhSUSA1正义转基因植株的GUS染色和PCR检测第120-121页
                2.3.4 GhSUSA1正义转基因植株的T0代Southern杂交验证第121-122页
                2.3.5 GhSUSA1正义转基因植株的表型及分子生物学初步分析第122-125页
                2.3.6 GhSUSA1过量表达对纤维品质形成的作用第125-127页
            2.4 转基因过程中突变体的获得和初步分析第127-130页
                2.4.1 一个高杆突变体的获得和初步分析第127-129页
                2.4.2 芽黄突变体和卷叶突变体的产生第129-130页
        3 讨论第130-135页
            3.1 农杆菌介导通过组织培养的棉花遗传转化第130-131页
            3.2 蔗糖合酶基因对棉花纤维和胚珠发育所起的作用第131-135页
全文结论第135-137页
参考文献第137-155页
附录第155-161页
致谢第161-163页
发表论文第163页

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