| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 缩略语表 | 第11-12页 |
| 1 文献综述 | 第12-22页 |
| 1.1 疏水蛋白研究概述 | 第12-13页 |
| 1.2 疏水蛋白的结构研究 | 第13-15页 |
| 1.2.1 疏水蛋白编码基因 | 第13-14页 |
| 1.2.2 溶解状态下疏水蛋白的结构研究 | 第14-15页 |
| 1.3 疏水蛋白的生理功能 | 第15-17页 |
| 1.3.1 真菌孢子表面的保护层 | 第15页 |
| 1.3.2 有利于形成气生菌丝和空气通道 | 第15页 |
| 1.3.3 有利于孢子的扩散与繁殖 | 第15-16页 |
| 1.3.4 疏水蛋白在真菌—植物的相互作用中的作用 | 第16页 |
| 1.3.5 其他生理作用 | 第16-17页 |
| 1.4 疏水蛋白的特殊性质 | 第17-19页 |
| 1.4.1 形成表面膜 | 第17页 |
| 1.4.2 形成泡沫 | 第17-18页 |
| 1.4.3 形成小杆层 | 第18-19页 |
| 1.4.4 表面吸附能力 | 第19页 |
| 1.5 疏水蛋白的潜在应用 | 第19-21页 |
| 1.5.1 双水相体系中的应用 | 第19-20页 |
| 1.5.2 蛋白质固定化 | 第20页 |
| 1.5.3 表面包被的生物材料 | 第20页 |
| 1.5.4 生物电极 | 第20页 |
| 1.5.5 表面活性剂 | 第20-21页 |
| 1.6 本课题的研究目的与意义 | 第21-22页 |
| 2 材料与方法 | 第22-32页 |
| 2.1 实验材料 | 第22页 |
| 2.2 主要试剂和设备 | 第22-24页 |
| 2.2.1 实验试剂和材料 | 第22-23页 |
| 2.2.2 实验设备 | 第23-24页 |
| 2.3 培养基与溶液配制 | 第24-25页 |
| 2.3.1 培养基配制 | 第24页 |
| 2.3.2 溶液配制 | 第24-25页 |
| 2.4 实验方法 | 第25-32页 |
| 2.4.1 猪肚菇菌丝的获得 | 第25-26页 |
| 2.4.2 菌丝疏水蛋白的分离纯化 | 第26页 |
| 2.4.3 疏水蛋白水溶液制备 | 第26页 |
| 2.4.4 疏水蛋白水溶液含量测定 | 第26-27页 |
| 2.4.5 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第27-28页 |
| 2.4.6 提取工艺优化 | 第28-29页 |
| 2.4.7 表面张力的测定 | 第29页 |
| 2.4.8 原子力显微镜 | 第29页 |
| 2.4.9 水接触角的测定 | 第29-30页 |
| 2.4.10 二级结构的测定 | 第30页 |
| 2.4.11 起泡性和泡沫稳定性 | 第30-31页 |
| 2.4.12 乳化性和乳化稳定性 | 第31页 |
| 2.4.13 保湿性研究 | 第31-32页 |
| 3 结果分析 | 第32-48页 |
| 3.1 蛋白含量测定标准曲线 | 第32-33页 |
| 3.2 疏水蛋白的SDS-PAGE分析 | 第33页 |
| 3.3 提取工艺优化 | 第33-37页 |
| 3.3.1 甲酸提取料液比比例最佳条件的确定 | 第33-34页 |
| 3.3.2 TFA提取料液比最佳条件的确定 | 第34-35页 |
| 3.3.3 TFA处理时间最佳条件的确定 | 第35页 |
| 3.3.4 多因素正交实验 | 第35-37页 |
| 3.4 表面张力的测定 | 第37-40页 |
| 3.5 原子力显微镜 | 第40-42页 |
| 3.6 水接触角测量 | 第42-44页 |
| 3.7 二级结构研究 | 第44-46页 |
| 3.8 起泡性和泡沫稳定性 | 第46-47页 |
| 3.9 乳化及乳化稳定性研究 | 第47页 |
| 3.10 保湿性研究 | 第47-48页 |
| 4 讨论 | 第48-50页 |
| 参考文献 | 第50-55页 |
| 致谢 | 第55页 |