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纤维素酶系在大肠杆菌中的构建及改造

致谢第5-6页
摘要第6-8页
Abstract第8-10页
缩写简表第11-12页
目录第12-18页
1 文献综述第18-47页
    1.1 生物质第18-21页
        1.1.1 可再生资源与生物质概述第18-19页
        1.1.2 木质纤维素的构成第19页
        1.1.3 纤维素第19-20页
        1.1.4 生物燃料第20-21页
        1.1.5 生物质资源的利用第21页
    1.2 纤维素酶概述第21-25页
        1.2.1 纤维素酶系的组成及协同作用第22-24页
        1.2.2 纤维素酶的结构与催化机制第24-25页
    1.3 纤维素酶的研究现状第25-32页
        1.3.1 丝状真菌纤维素酶表达调控的研究第25-26页
        1.3.2 纤维素酶基因的异源表达第26-27页
        1.3.3 纤维素酶系中酶组分的重组第27-29页
        1.3.4 通过蛋白质工程改造纤维素酶第29-32页
    1.4 酶的定向进化第32-41页
        1.4.1 定向进化的背景与原理第32-33页
        1.4.2 突变体库的构建方法第33-35页
        1.4.3 高通量筛选方法第35-38页
        1.4.4 纤维素酶的定向进化第38-41页
    1.5 多基因共表达研究现状第41-45页
        1.5.1 多质粒共转化系统第41-42页
        1.5.2 多顺反子系统第42-43页
        1.5.3 多启动子系统第43-45页
    1.6 课题研究的内容与意义第45-47页
2 纤维素酶的克隆及诱导表达第47-65页
    2.1 材料第47-49页
        2.1.1 菌种与质粒第47页
        2.1.2 工具酶第47-48页
        2.1.3 试剂第48页
        2.1.4 主要仪器第48-49页
    2.2 实验方法第49-61页
        2.2.1 琼脂糖凝胶电泳第49页
        2.2.2 里氏木霉基因组提取第49页
        2.2.3 粪肥纤维单胞菌基因组提取第49-50页
        2.2.4 质粒的提取第50页
        2.2.5 目的基因的扩增第50-53页
        2.2.6 基因的纯化、酶切以及与载体的连接第53-55页
        2.2.7 大肠杆菌BL21(DE3)普通感受态的制备以及转化第55-56页
        2.2.8 重组子的鉴定第56页
        2.2.9 目标蛋白的诱导表达及处理第56-57页
        2.2.10 聚丙烯酰胺凝胶电泳第57-58页
        2.2.11 Bradford法测定蛋白浓度第58-59页
        2.2.12 目标蛋白的纯化第59-61页
    2.3 实验结果与讨论第61-64页
        2.3.1 目的基因的扩增第61页
        2.3.2 目的基因的克隆第61-62页
        2.3.3 目的蛋白的诱导表达和纯化第62-64页
        2.3.4 蛋白浓度标准曲线第64页
    2.4 本章小结第64-65页
3 共表达质粒的构建第65-90页
    3.1 实验材料第65-67页
        3.1.1 菌种与质粒第65-66页
        3.1.2 工具酶第66页
        3.1.3 试剂第66页
        3.1.4 主要仪器第66-67页
    3.2 实验方法第67-82页
        3.2.1 双顺反子表达盒构建方法第67页
        3.2.2 构建源于pET30a的生物砖质粒第67-72页
        3.2.3 质粒的构建第72-79页
        3.2.4 蛋白表达与纯化第79-81页
        3.2.5 目标蛋白酶活测定第81-82页
        3.2.6 酶反应特性测定第82页
    3.3 实验结果与讨论第82-88页
        3.3.1 质粒的构建第82-83页
        3.3.2 XYN和BGL共表达的情况第83-85页
        3.3.3 酶活的比较第85-88页
        3.3.4 酶的特性第88页
    3.4 本章小结第88-90页
4 纤维素酶系在大肠杆菌中的构建第90-109页
    4.1 实验材料第91-92页
        4.1.1 菌种与质粒第91页
        4.1.2 工具酶第91页
        4.1.3 试剂第91-92页
        4.1.4 主要仪器第92页
    4.2 实验方法第92-102页
        4.2.1 单顺反子质粒的构建第92-94页
        4.2.2 多启动子表达盒的构建第94-97页
        4.2.3 多顺反子质粒的构建第97-100页
        4.2.4 蛋白表达与纯化第100-102页
        4.2.5 酶活的测定第102页
    4.3 实验结果与讨论第102-108页
        4.3.1 P1-P9菌株中纤维素酶的表达与纯化第102-104页
        4.3.2 共表达纤维素酶产还原糖的能力第104-105页
        4.3.3 CbhA,CenA和BGL降解纤维素产葡萄糖的能力第105-106页
        4.3.4 CbhA与BGL之间的协同作用第106页
        4.3.5 CenA与BGL之间的协同作用第106-107页
        4.3.6 共表达的纤维素酶系混合物产葡萄糖的情况第107-108页
    4.4 本章小结第108-109页
5 内切酶和p-葡萄糖苷酶的共定向进化第109-126页
    5.1 实验材料第110-112页
        5.1.1 菌种与质粒第110-111页
        5.1.2 工具酶第111页
        5.1.3 试剂第111页
        5.1.4 主要仪器第111-112页
    5.2 实验步骤第112-119页
        5.2.1 大肠杆菌BL21(DE3)超级感受态的制备第112-113页
        5.2.2 双顺反子表达质粒的构建第113页
        5.2.3 突变体文库的构建第113-114页
        5.2.4 内切酶和β-葡萄糖苷酶的诱导表达第114-115页
        5.2.5 高通量筛选方法的建立第115页
        5.2.6 CenA和BGL突变体的亚克隆及诱导表达第115-117页
        5.2.7 重组突变体A12-H1的构建第117-118页
        5.2.8 阳性突变体的表达与纯化第118页
        5.2.9 酶活的测定第118-119页
    5.3 实验结果与讨论第119-124页
        5.3.1 突变体库的构建第119页
        5.3.2 第一轮筛选结果第119-120页
        5.3.3 第二轮筛选结果第120-122页
        5.3.4 第三轮筛选结果第122-124页
        5.3.5 重组突变体A12-H1的构建及诱导表达第124页
    5.4 本章小结第124-126页
6 外切酶的定向进化第126-138页
    6.1 实验材料第126-128页
        6.1.1 菌种与质粒第126页
        6.1.2 工具酶第126-127页
        6.1.3 试剂第127-128页
        6.1.4 主要仪器第128页
    6.2 实验步骤第128-134页
        6.2.1 大肠杆菌BL21(DE3)超级感受态的制备第128页
        6.2.2 CbhA与BGL双顺反子质粒p cbhA-bgl的构建第128-129页
        6.2.3 突变体文库的构建第129-131页
        6.2.4 外切酶和β-葡萄糖苷酶的诱导表达第131页
        6.2.5 高通量筛选方法的建立第131-132页
        6.2.6 CbhA突变体的亚克隆及诱导表达第132-133页
        6.2.7 纤维素酶系阳性突变体共表达载体的构建第133页
        6.2.8 阳性突变体蛋白的表达与纯化及SDS-PAGE电泳检测第133页
        6.2.9 酶活的测定第133-134页
    6.3 结果与讨论第134-136页
        6.3.1 突变体库的构建第134页
        6.3.2 筛选结果第134页
        6.3.3 蛋白表达与纯化第134-135页
        6.3.4 突变体活性分析第135-136页
        6.3.5 CbhA、CenA和BGL阳性突变体的整合第136页
    6.4 本章小结第136-138页
7 结论与展望第138-142页
    7.1 结论第138-140页
    7.2 展望第140-142页
参考文献第142-155页
攻读博士学位期间主要研究成果第155页

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