| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1 引言 | 第9-11页 |
| 2 材料与方法 | 第11-16页 |
| 2.1 供试菌种 | 第11页 |
| 2.2 供试小麦 | 第11页 |
| 2.3 主要仪器及试剂 | 第11页 |
| 2.3.1 主要仪器 | 第11页 |
| 2.3.2 主要试剂 | 第11页 |
| 2.4 幼苗的培养和接种 | 第11-12页 |
| 2.4.1 幼苗的培养 | 第11-12页 |
| 2.4.2 幼苗的接种 | 第12页 |
| 2.5 药物注射 | 第12页 |
| 2.6 H_2O_2的 DAB 染色观察 | 第12页 |
| 2.6.1 取材与染色 | 第12页 |
| 2.6.2 固定脱色 | 第12页 |
| 2.6.3 透明 | 第12页 |
| 2.7 H_2O_2的亚细胞定位观察 | 第12-13页 |
| 2.7.1 电镜样品的制备 | 第12-13页 |
| 2.7.2 透射电镜观察 | 第13页 |
| 2.8 RT-PCR 检测基因表达 | 第13-16页 |
| 2.8.1 RNA 提取 | 第13-14页 |
| 2.8.2 基因半定量 RT-PCR | 第14-15页 |
| 2.8.3 实验中所用引物 | 第15-16页 |
| 3 结果与分析 | 第16-28页 |
| 3.1 小麦与叶锈菌互作体系中 H_2O_2的组织学定位 | 第16-20页 |
| 3.1.1 DAB 检测小麦叶片 H_2O_2方法的验证 | 第16-17页 |
| 3.1.2 小麦与叶锈菌互作过程中 H_2O_2的组织学观察 | 第17-20页 |
| 3.2 小麦与叶锈菌互作过程中 H_2O_2的亚细胞定位 | 第20-26页 |
| 3.2.1 电镜包埋块的半薄定位 | 第20-21页 |
| 3.2.2 小麦与叶锈菌互作过程中 H_2O_2的超微结构观察 | 第21-26页 |
| 3.3 小麦与叶锈菌互作过程中与 H_2O_2代谢相关基因的表达分析 | 第26-28页 |
| 4 讨论 | 第28-32页 |
| 4.1 用于活性氧检测的互作体系和分析方法 | 第28页 |
| 4.2 植物与病原体互作过程中活性氧爆发的可能来源 | 第28-29页 |
| 4.3 植物与病原体互作过程中 H_2O_2转录水平的调控机制 | 第29-30页 |
| 4.4 小麦抵御叶锈菌侵染过程中的 HR 反应 | 第30页 |
| 4.5 H_2O_2在小麦抵御叶锈菌侵染过程中的作用 | 第30-32页 |
| 5 结论 | 第32-33页 |
| 参考文献 | 第33-36页 |
| 在读期间发表的学术论文 | 第36-37页 |
| 作者简介 | 第37-38页 |
| 致谢 | 第38-39页 |
