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稻瘟病菌MoPEX7与MoPEX20基因的双敲除及突变体表型分析

摘要第8-10页
ABSTRACT第10-11页
上篇 文献综述第12-27页
    稻瘟病菌与过氧化物酶体第13-23页
        1 稻瘟病与稻瘟病菌第13页
        2 稻瘟病菌的侵染循环第13-15页
            2.1 孢子萌发第14页
            2.2 附着胞的分化与形成第14-15页
            2.3 侵染栓的形成与侵入第15页
            2.4 侵入后菌丝分化与扩展第15页
            2.5 产孢与再侵染第15页
        3 稻瘟病菌致病性的相关基因第15-17页
            3.1 分生孢子产生相关基因第15-16页
            3.2 与稻瘟病菌附着胞分化和成熟相关的基因第16-17页
        4 过氧化物酶体第17-19页
            4.1 过氧化物酶体的合成第17-18页
            4.2 过氧化物酶体基质蛋白的输入第18页
            4.3 过氧化物酶体膜蛋白的输入第18-19页
            4.4 过氧化物酶体的增殖第19页
        5 过氧化物酶体与真菌的致病性第19-20页
            5.1 过氧化物酶体与脂肪酸的B-氧化第20页
            5.2 脂肪酸B-氧化对病原真菌的影响第20页
        6 本研究的目的与意义第20-23页
    参考文献第23-27页
下篇 研究内容第27-58页
    MOPEX7与MOPEX20的基因双敲除及突变体表型分析第28-56页
        1 实验材料第28-32页
            1.1 菌株与寄主植物第28页
            1.2 试剂第28-29页
            1.3 仪器第29页
            1.4 培养基第29-32页
        2 实验方法第32-39页
            2.1 敲除载体的构建第32-35页
                2.1.1 PCR目标片段的扩增第32-33页
                2.1.2 凝胶琼脂糖电泳第33页
                2.1.3 PCR胶回收(DNA片段)第33页
                2.1.4 骨架与片段的链接第33-34页
                2.1.5 大肠杆菌转化第34页
                2.1.6 小剂量DNA剂量的提取第34页
                2.1.7 酶切验证第34-35页
            2.2 农杆菌转化第35页
            2.3 转化子的获得(ATMT转化)第35-36页
            2.4 转化子的验证第36页
            2.5 转化子的保存与菌株培养第36页
            2.6 表型分析第36-39页
                2.6.1 菌落生长速度第36页
                2.6.2 产孢量测定第36页
                2.6.3 孢子萌发与附着胞的形成第36-37页
                2.6.4 黑色素的测定第37页
                2.6.5 大麦离体喷雾第37页
                2.6.6 水稻离体喷雾第37页
                2.6.7 大麦菌丝块接种第37-38页
                2.6.8 大麦菌丝接种第38页
                2.6.9 侵染情况测定第38页
                2.6.10 分生孢子的脂肪粒染色第38页
                2.6.11 碳源利用第38页
                2.6.12 细胞壁完整性及活性氧的耐受性的测定第38-39页
            2.7 PTS1和PTS2相关蛋白的定位第39页
        3 结果与分析第39-53页
            3.1 PEX20和PEX7基因双敲突变体的获得第39-40页
            3.2 突变体仅影响PTS2蛋白的定位第40-41页
            3.3 突变体表型差异分析第41-52页
                3.3.1 双敲突变体气生菌丝变稀薄第41-43页
                3.3.2 突变体产孢量下降第43页
                3.3.3 突变体孢子萌发率及附着胞形成率下降第43-44页
                3.3.4 突变体附着的彭压降低第44-45页
                3.3.5 突变体造成脂肪转运速度下降第45-46页
                3.3.6 突变体黑色素产量下降第46-47页
                3.3.7 突变体致病性下降第47-48页
                3.3.8 突变体在大麦叶片中的侵染菌丝量少第48-49页
                3.3.9 突变体的脂肪酸利用率下降第49-50页
                3.3.10 突变体的细胞壁完整性存在缺陷第50-51页
                3.3.11 突变体对活性氧的耐受性减弱第51-52页
            3.4 功能差异分析第52-53页
        4 讨论第53-56页
    参考文献第56-58页
附录1 缓冲液配方第58-59页
附录2 农杆菌感受态的制备与转化第59-60页
附录3 cTAB法提取基因组DNA第60-61页
附录4 TRIZOL法提取真菌总RNA及反转录第61-63页
附录5 REAL-TIME PCR方法(SYBR GREEN嵌合荧光法)第63-64页
附录6 稻瘟病菌ATMT转化第64-65页
附录7 缩略词第65-66页
致谢第66页

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