| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-11页 |
| 部分缩写的中英文对照(Abbreviation) | 第12-14页 |
| 引言 | 第14-15页 |
| 第一篇 文献综述 | 第15-28页 |
| 第一章 PCV2与天然免疫 | 第16-28页 |
| 1 PCV2的简介 | 第16-19页 |
| 1.1 PCV2的发现与特征 | 第16-17页 |
| 1.2 PCV2的基因结构与编码蛋白 | 第17页 |
| 1.3 PCV2的致病机理 | 第17-18页 |
| 1.4 PCV2的流行病学 | 第18-19页 |
| 2 抗病毒天然免疫的简介 | 第19-24页 |
| 2.1 Toll样受体 | 第20-21页 |
| 2.2 RIG-1样受体 | 第21-23页 |
| 2.3 DNA识别受体 | 第23-24页 |
| 3 干扰素简介 | 第24-26页 |
| 3.1 Ⅰ型干扰素信号传导通路 | 第25-26页 |
| 3.2 Ⅰ干扰素诱导抗病毒基因 | 第26页 |
| 4 病毒逃逸天然免疫的机制 | 第26-27页 |
| 5 研究目的与意义 | 第27-28页 |
| 第二篇 试验研究 | 第28-58页 |
| 第二章 PCV2诱导PK-15细胞生成IFN-β的信号通路研究 | 第30-48页 |
| 1 材料与方法 | 第32-40页 |
| 1.1 病毒与细胞 | 第32页 |
| 1.2 主要仪器和试剂 | 第32-33页 |
| 1.3 PK-15细胞的复苏、培养、冻存 | 第33-34页 |
| 1.4 间接免疫荧光检测PK-15细胞感染PCV2的情况 | 第34页 |
| 1.5 MTT法检测IRF3和NF-κB抑制剂对PK-15细胞活力的影响 | 第34页 |
| 1.6 荧光定量PCR检测PK-15细胞中相关基因的表达 | 第34-37页 |
| 1.7 Western检测PK-15细胞中相关蛋白的表达 | 第37-40页 |
| 1.8 数据的处理与分析 | 第40页 |
| 2 结果 | 第40-44页 |
| 2.1 PCV2在PK-15细胞中的复制情况 | 第40页 |
| 2.2 PCV2感染对PK-15细胞中IFN-β表达的影响 | 第40-41页 |
| 2.3 IRF3和NF-κB抑制剂对PK-15细胞活力的影响 | 第41-42页 |
| 2.4 IRF3和NF-κB抑制剂处理对PCV2感染后PK-15细胞中IFN-β表达的影响 | 第42页 |
| 2.5 PCV2感染对PK-15细胞中MAVS、Sting、IRF3、IRF7 mRNA含量的影响 | 第42-43页 |
| 2.6 PCV2感染对PK-15细胞中p-IRF3、IRF3、IRF7蛋白含量的影响 | 第43-44页 |
| 2.7 PCV2感染对PK-15细胞中RIG-1、MDA-5、DAI表达的影响 | 第44页 |
| 3 讨论 | 第44-48页 |
| 第三章 PCV2抑制poly(I:C)诱导PK-15细胞生成IFN-β的机制初探 | 第48-58页 |
| 1 材料与方法 | 第50-52页 |
| 1.1 细胞与病毒 | 第50页 |
| 1.2 主要试剂和仪器 | 第50-51页 |
| 1.3 PK-15细胞复苏、传代、冻存 | 第51页 |
| 1.4 实验分组与处理 | 第51页 |
| 1.5 MTT法检测poly(I:C)对PK-15细胞活力的影响 | 第51页 |
| 1.6 荧光定量PCR检测PK-15细胞中相关基因的表达 | 第51-52页 |
| 1.7 Western检测PK-15细胞中p-IRF3、RIG-1的蛋白含量 | 第52页 |
| 1.8 数据处理与分析 | 第52页 |
| 2 结果 | 第52-56页 |
| 2.1 Poly(I:C)对PK-15细胞活力的影响 | 第52-53页 |
| 2.2 PCV2对poly(I:C)处理后PK-15细胞中IFN-β表达的影响 | 第53-54页 |
| 2.3 PCV2对poly(I:C)处理后PK-15细胞中p-IRF3表达的影响 | 第54页 |
| 2.4 PCV2对poly(I:C)处理后PK-15细胞中RIG-1、MDA-5表达的影响 | 第54-55页 |
| 2.5 PCV2对poly(I:C)处理后PK-15细胞中Mx1、OAS、ISG15表达的影响 | 第55-56页 |
| 3 讨论 | 第56-58页 |
| 参考文献 | 第58-66页 |
| 硕士期间发表论文 | 第66-68页 |
| 全文总结 | 第68-70页 |
| 致谢 | 第70页 |
