| 摘要 | 第3-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 第1章 引言 | 第14-17页 |
| 第2章 参麦方主要效应部位及效应组分对大鼠原代肝细胞中OPD转运的影响 | 第17-36页 |
| 2.1 材料 | 第17-19页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第17页 |
| 2.1.2 主要药品与试剂 | 第17-18页 |
| 2.1.3 主要仪器与设备 | 第18-19页 |
| 2.2 方法 | 第19-24页 |
| 2.2.1 溶液的配制 | 第19-20页 |
| 2.2.2 大鼠原代肝细胞的分离 | 第20-21页 |
| 2.2.4 原代肝细胞样本中OPD测定 | 第21-22页 |
| 2.2.5 原代肝细胞蛋白含量测定 | 第22-23页 |
| 2.2.6 参麦方主要效应部位及效应组分对大鼠原代肝细胞中OPD转运的影响 | 第23-24页 |
| 2.2.7 统计分析 | 第24页 |
| 2.3 结果 | 第24-34页 |
| 2.3.1 大鼠原代肝细胞的细胞活率 | 第24页 |
| 2.3.2 药物浓度对大鼠原代肝细胞的毒性评价结果 | 第24-25页 |
| 2.3.3 肝细胞样品中OPD浓度测定方法学评价结果 | 第25-27页 |
| 2.3.4 原代肝细胞蛋白含量测定结果 | 第27-28页 |
| 2.3.5 参麦方主要效应部位及效应组分对大鼠原代肝细胞中OPD转运的影响 | 第28-34页 |
| 2.4 讨论 | 第34-36页 |
| 第3章 参麦方主要效应部位及效应组分对OATP1B1- HEK293T/OATP1B3-HEK293T细胞中OPD转运的影响 | 第36-54页 |
| 3.1 材料 | 第36页 |
| 3.1.1 细胞株 | 第36页 |
| 3.1.2 主要药品与试剂 | 第36页 |
| 3.1.3 主要仪器与设备 | 第36页 |
| 3.2 方法 | 第36-40页 |
| 3.2.1 溶液的配制 | 第36-37页 |
| 3.2.2 HEK293T细胞培养 | 第37页 |
| 3.2.3 药物对HEK293T细胞毒性测定 | 第37页 |
| 3.2.4 HEK293T细胞样本中OPD测定 | 第37-39页 |
| 3.2.5 HEK293T细胞蛋白含量测定 | 第39页 |
| 3.2.6 参麦方主要效应部位及效应组分对OATP1B1-HEK293T及OATP1B3-HEK293T细胞中OPD转运的影响 | 第39-40页 |
| 3.3 结果 | 第40-52页 |
| 3.3.1 OATP1B1-HEK293T/OATP1B3-HEK293T细胞的培养 | 第40-41页 |
| 3.3.2 药物浓度对HEK293T细胞的毒性评价结果 | 第41-42页 |
| 3.3.3 HEK293T细胞样品中OPD浓度测定方法学评价结果 | 第42-45页 |
| 3.3.4 HEK293T细胞蛋白含量测定结果 | 第45页 |
| 3.3.5 参麦方主要效应部位与效应组分对OATP1B1-HEK293T/OATP1B3- HEK293T细胞中OPD转运的影响 | 第45-52页 |
| 3.4 讨论 | 第52-54页 |
| 第4章 参麦注射液HPLC逐级分离组分对OATP1B1- HEK293T/OATP1B3-HEK293T细胞中OPD转运的影响 | 第54-65页 |
| 4.1 材料 | 第54页 |
| 4.1.1 细胞株 | 第54页 |
| 4.1.2 主要药品与试剂 | 第54页 |
| 4.1.3 主要仪器与设备 | 第54页 |
| 4.2 方法 | 第54-57页 |
| 4.2.1 参麦注射液的HPLC初级分离方法 | 第54-55页 |
| 4.2.2 初级分离组分对OATP1B1-HEK293T/OATP1B3-HEK293T细胞中OPD转运的影响 | 第55页 |
| 4.2.3 SMI-3（45-62min）复杂组分的HPLC再分离方法 | 第55-56页 |
| 4.2.4 再离组分对OATP1B1-HEK293T/OATP1B3-HEK293T细胞中OPD转运的影响 | 第56页 |
| 4.2.5 统计分析 | 第56-57页 |
| 4.3 结果 | 第57-63页 |
| 4.3.1 参麦注射液HPLC初级分离组分图谱确认 | 第57-58页 |
| 4.3.2 初级分离组分对OATP1B1-HEK293T/OATP1B3-HEK293T细胞中OPD转运的影响 | 第58-60页 |
| 4.3.3 SMI-3（45-62min）复杂组分的HPLC再分离图谱确认 | 第60-61页 |
| 4.3.4 再分离组分对OATP1B1-HEK293T/OATP1B3-HEK293T细胞中OPD转运的影响 | 第61-63页 |
| 4.4 讨论 | 第63-65页 |
| 第5章 人参皂苷Rb1、Rd对大鼠体内OPD转运的影响 | 第65-73页 |
| 5.1 材料 | 第65页 |
| 5.1.1 实验动物 | 第65页 |
| 5.1.2 主要药品与试剂 | 第65页 |
| 5.1.3 主要仪器与设备 | 第65页 |
| 5.2 方法 | 第65-68页 |
| 5.2.1 大鼠血浆中 OPD 的测定条件 | 第65-66页 |
| 5.2.2 溶液的配制 | 第66页 |
| 5.2.3 血样处理方法 | 第66页 |
| 5.2.4 方法学考察 | 第66-67页 |
| 5.2.5 大鼠体内药代动力学研究 | 第67页 |
| 5.2.6 数据处理与分析 | 第67-68页 |
| 5.3 结果 | 第68-71页 |
| 5.3.1 方法学确证结果 | 第68-70页 |
| 5.3.2 药代动力学研究结果 | 第70-71页 |
| 5.4 讨论 | 第71-73页 |
| 第6章 结论与展望 | 第73-75页 |
| 6.1 结论 | 第73页 |
| 6.2 展望 | 第73-75页 |
| 参考文献 | 第75-80页 |
| 致谢 | 第80-81页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第81-82页 |
| 综述 皂苷类化合物对转运蛋白的影响及其转运研究 | 第82-89页 |
| 参考文献 | 第87-89页 |
