| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 第1章 前言 | 第15-21页 |
| 1.1 干细胞疗法概论 | 第15-16页 |
| 1.2 BMSCS治疗中枢神经系统相关疾病 | 第16-17页 |
| 1.3 烧伤与大脑损伤 | 第17-19页 |
| 1.3.1 烧伤后多脏器损伤机理 | 第17-18页 |
| 1.3.2 烧伤后大脑损伤 | 第18-19页 |
| 1.4 凋亡和自噬途径 | 第19-21页 |
| 1.4.1 凋亡途径 | 第19-20页 |
| 1.4.2 自噬途径 | 第20-21页 |
| 第2章 材料与方法 | 第21-33页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第21-25页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第21-22页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第22-23页 |
| 2.1.3 实验动物 | 第23页 |
| 2.1.4 主要试剂的配制 | 第23-25页 |
| 2.2 方法 | 第25-33页 |
| 2.2.1 BMSCs的分离、培养和扩增 | 第25页 |
| 2.2.2 BMSCs表面标志鉴定 | 第25页 |
| 2.2.3 BMSCs细胞周期测定 | 第25-26页 |
| 2.2.4 BMSCs多向分化潜能的鉴定 | 第26-27页 |
| 2.2.5 实验动物分组 | 第27页 |
| 2.2.6 制备大鼠烧伤模型 | 第27-28页 |
| 2.2.7 CM-Dil标记的BMSCs移植 | 第28页 |
| 2.2.8 一般状态描述 | 第28页 |
| 2.2.9 病理组织学观察和尼氏体染色 | 第28-29页 |
| 2.2.10 免疫组织化学法检测大脑组织蛋白分子的表达 | 第29-30页 |
| 2.2.11 TUNEL法染色 | 第30页 |
| 2.2.12 Western Blot检测大鼠大脑组织蛋白表达 | 第30-31页 |
| 2.2.13 双免疫荧光法检测大脑组织NSE和LC3B蛋白表达 | 第31-32页 |
| 2.2.14 激光共聚焦显微镜观察BMSCs在大脑组织的定植 | 第32页 |
| 2.2.15 统计学分析 | 第32-33页 |
| 第3章 结果 | 第33-47页 |
| 3.1 骨髓间充质干细胞的分离培养与鉴定 | 第33-35页 |
| 3.1.1 BMSCs的培养 | 第33页 |
| 3.1.2 BMSCs的鉴定 | 第33-35页 |
| 3.2 大鼠烧伤模型的建立 | 第35-37页 |
| 3.2.1 烧伤后大鼠一般状态及皮肤病理组织改变 | 第35-36页 |
| 3.2.2 大鼠烧伤一周后大脑神经细胞改变 | 第36-37页 |
| 3.3 BMSCS移植入大鼠烧伤模型体内 | 第37-47页 |
| 3.3.1 BMSCs移植后大鼠一般状态及体重的变化 | 第37页 |
| 3.3.2 BMSCs移植后大鼠大脑神经细胞的改变 | 第37-40页 |
| 3.3.3 BMSCs移植后大鼠大脑凋亡通路的改变 | 第40-43页 |
| 3.3.4 BMSCs移植后大鼠大脑自噬蛋白的改变 | 第43-46页 |
| 3.3.5 BMSCs在大鼠大脑皮层的定植 | 第46-47页 |
| 第4章 讨论 | 第47-53页 |
| 4.1 BMSCS的培养与鉴定 | 第48页 |
| 4.1.1 BMSCs的原代培养、细胞周期与分化能力的鉴定 | 第48页 |
| 4.1.2 BMSCs表面标志的鉴定 | 第48页 |
| 4.2 烧伤模型的建立以及烧伤后的脑损伤 | 第48-49页 |
| 4.3 细胞移植后烧伤大鼠损伤的修复以及BMSCS在大鼠体内的定位 | 第49-50页 |
| 4.4 BMSCs 移植后大鼠脑组织凋亡蛋白的改变 | 第50页 |
| 4.5 BMSCS移植后大鼠脑组织自噬通路的改变 | 第50-51页 |
| 4.6 自噬途径和凋亡通路之间的可能联系 | 第51-53页 |
| 第5章 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-64页 |
| 作者简介 | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65页 |
