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两种降糖药物与牛血清白蛋白的相互作用及蓝铜蛋白His143性质初步研究

摘要第5-6页
Abstract第6-7页
缩略词第11-12页
第1章 绪论第12-25页
    1.1 研究对象概述第12-17页
        1.1.1 血清白蛋白第12-15页
        1.1.2 降糖药物第15-17页
        1.1.3 蓝铜蛋白第17页
    1.2 药物小分子与BSA相互作用的研究方法第17-21页
        1.2.1 荧光光谱法第17-19页
        1.2.2 紫外-可见分光吸收光谱法第19-20页
        1.2.3 圆二色谱法第20页
        1.2.4 毛细管电泳法第20-21页
        1.2.5 核磁共振第21页
        1.2.6 其他研究手段第21页
    1.3 药物与蛋白质相互作用参数分析第21-23页
        1.3.1 猝灭类型,结合常数的求取和分析第21-23页
        1.3.2 结合作用力的确定和分析第23页
    1.4 研究目的第23页
    1.5 本文研究内容第23-25页
第2章 光谱法研究PIO与BSA的相互作用第25-36页
    2.1 引言第25-26页
    2.2 仪器与试剂第26页
    2.3 实验方法第26-27页
        2.3.1 荧光光谱法第26页
        2.3.2 紫外可见光谱法第26-27页
    2.4 结果与讨论第27-34页
        2.4.1 PIO对BSA荧光光谱影响第27页
        2.4.2 荧光猝灭方式第27-29页
        2.4.3 结合常数和结合位点的计算第29-30页
        2.4.4 PIO与BSA的结合方式第30-31页
        2.4.5 PIO浓度对BSA结构的影响第31-34页
    2.5 本章小结第34-36页
第3章 光谱法研究MET与BSA的相互作用第36-47页
    3.1 引言第36-37页
    3.2 仪器与试剂第37页
    3.3 实验方法第37页
    3.4 结果与讨论第37-45页
        3.4.1 MET对BSA荧光光谱影响第37页
        3.4.2 荧光猝灭方式第37-39页
        3.4.3 结合常数和结合位点的计算第39-40页
        3.4.4 MET与BSA的结合方式第40-41页
        3.4.5 MET浓度对BSA结构的影响第41-45页
    3.5 本章小结第45-47页
第4章 光谱法和分子模拟技术研究RUS HIS143的性质第47-58页
    4.1 引言第47页
    4.2 实验材料、试剂与仪器设备第47-49页
        4.2.1 实验材料第47页
        4.2.2 实验试剂第47-48页
        4.2.3 实验仪器与设备第48-49页
    4.3 实验方法第49-53页
        4.3.1 PCR扩增第49-50页
        4.3.2 酶切PCR产物和载体pLM1第50页
        4.3.3 目的片段与载体连接第50页
        4.3.4 克隆转化第50页
        4.3.5 阳性克隆筛选第50-51页
        4.3.6 蛋白质表达的转化及最佳条件确定第51页
        4.3.7 蛋白质纯化第51页
        4.3.8 定点突变第51-52页
        4.3.9 定点突变阳性克隆筛选第52页
        4.3.10 突变蛋白的表达及纯化第52页
        4.3.11 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳第52页
        4.3.12 紫外分光光度计第52页
        4.3.13 分子结构模拟第52-53页
    4.4 结果与讨论第53-56页
        4.4.1 SDS-PAGE分析纯化蛋白第53页
        4.4.2 紫外分析RUS及H143G的性质第53-54页
        4.4.3 RUS和H143G分子结构模拟第54-56页
    4.5 本章小结第56-58页
结论第58-60页
参考文献第60-71页
附录 攻读学位期间所发表的学术论文目录第71-72页
致谢第72页

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