摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
1 前言 | 第13-26页 |
1.1 刺激隐核虫的流行病学及防治措施 | 第13-19页 |
1.1.1 刺激隐核虫病原学 | 第13-14页 |
1.1.2 刺激隐核虫生活史 | 第14-15页 |
1.1.3 刺激隐核虫的宿主及发病特征 | 第15-16页 |
1.1.4 刺激隐核虫的危害及防治 | 第16-19页 |
1.1.4.1 “白点病”的危害 | 第16-17页 |
1.1.4.2 刺激隐核虫的防治措施 | 第17-19页 |
1.2 鱼类免疫系统的研究进展 | 第19-24页 |
1.2.1 鱼类的免疫器官和组织 | 第19-20页 |
1.2.2 鱼类的非特异性免疫应答 | 第20-22页 |
1.2.3 鱼类的特异性免疫应答 | 第22-24页 |
1.2.3.1 淋巴细胞 | 第22-23页 |
1.2.3.2 免疫球蛋白(Ig) | 第23-24页 |
1.3 本实验研究的目的及意义 | 第24-26页 |
2 刺激隐核虫病的防治研究 | 第26-37页 |
2.1 材料与方法 | 第27-29页 |
2.1.1 刺激隐核虫滋养体的收集、包囊和幼虫的培养以及形态学观察 | 第27页 |
2.1.2 实验用中草药 | 第27-28页 |
2.1.3 中草药药液制备 | 第28页 |
2.1.4 中草药杀灭滋养体、幼虫 | 第28-29页 |
2.1.5 温度和盐度对包囊破裂、幼虫脱包产出的影响 | 第29页 |
2.2 结果 | 第29-34页 |
2.2.1 症状及虫体形态 | 第29-30页 |
2.2.2 中草药对滋养体杀灭效果 | 第30-32页 |
2.2.3 中草药对幼虫杀灭效果 | 第32-34页 |
2.2.4 温度、盐度对包囊破裂幼虫产出的影响 | 第34页 |
2.3 讨论 | 第34-37页 |
3 红鳍东方鲀免疫球蛋白的纯化及特性分析 | 第37-49页 |
3.1 实验材料与试剂 | 第37-38页 |
3.1.1 实验用鱼 | 第37-38页 |
3.1.2 主要试剂 | 第38页 |
3.1.3 主要仪器 | 第38页 |
3.2 实验方法 | 第38-42页 |
3.2.1 红鳍东方鲀血清制备 | 第38页 |
3.2.2 饱和硫酸铵粗提IgM | 第38页 |
3.2.3 层析 | 第38-41页 |
3.2.3.1 HiTrap IgM Purification Column亲和层析 | 第38-39页 |
3.2.3.2 HiTrap Protein A Sepharose Column亲和层析 | 第39-40页 |
3.2.3.3 HiTrap DEAE Sepharose Fast Flow Column离子交换层析 | 第40-41页 |
3.2.4 浓缩 | 第41页 |
3.2.5 纯度分析 | 第41-42页 |
3.2.6 分子量测定 | 第42页 |
3.3 实验结果 | 第42-46页 |
3.3.1 饱和硫酸铵粗提纯化IgM的结果 | 第42-43页 |
3.3.2 SDS-PAGE电泳分析的结果 | 第43-45页 |
3.3.3 红鳍东方鲀血清蛋白浓度 | 第45页 |
3.3.4 红鳍东方鲀与其他4种海水鱼的igM的比较 | 第45-46页 |
3.4 讨论 | 第46-49页 |
4 红鳍东方纯免疫球蛋白IgM多克隆抗体的制备及其与其他4种海水鱼类的免疫交叉反应 | 第49-54页 |
4.1 实验材料与试剂 | 第49页 |
4.1.1 实验动物 | 第49页 |
4.1.2 主要试剂 | 第49页 |
4.2 实验方法 | 第49-50页 |
4.2.1 鼠抗血清IgM的制备 | 第49页 |
4.2.2 鼠抗红鳍东方鲀血清IgM效价的测定 | 第49-50页 |
4.2.3 鼠抗血清IgM的Western Blot检测 | 第50页 |
4.2.4 鼠抗血清IgM交叉反应检测 | 第50页 |
4.3 实验结果 | 第50-52页 |
4.3.1 鼠抗红鳍东方鲀IgM血清效价 | 第50-51页 |
4.3.2 鼠抗IgM血清的Western Blot检测 | 第51页 |
4.3.3 鼠抗IgM血清交叉反应检测 | 第51-52页 |
4.4 讨论 | 第52-54页 |
总结 | 第54-56页 |
参考文献 | 第56-62页 |
致谢 | 第62-63页 |
个人简历 | 第63页 |
硕士期间发表文章 | 第63页 |