| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第一章 引言 | 第16-25页 |
| 1.1 叶片发育机理 | 第16-17页 |
| 1.1.1 植物叶片发育 | 第16页 |
| 1.1.2 叶片起始和极性建立 | 第16-17页 |
| 1.1.3 细胞分裂与细胞增大 | 第17页 |
| 1.2 生长素调控学说 | 第17-18页 |
| 1.3 影响叶片生长和建成的因素 | 第18-19页 |
| 1.3.1 PHB-KAN模式 | 第18页 |
| 1.3.2 KNOX-ARP模式 | 第18-19页 |
| 1.3.3 CIN-TCP模式 | 第19页 |
| 1.4 重要窄叶基因的克隆和功能分析 | 第19-24页 |
| 1.4.1 水稻窄叶基因 | 第19-20页 |
| 1.4.2 编码核糖体的基因 | 第20-21页 |
| 1.4.3 WUSCHEL相关同源基因 | 第21-22页 |
| 1.4.4 水稻细胞周期调节基因 | 第22-24页 |
| 1.5 本研究的目的及其意义 | 第24-25页 |
| 第二章 水稻窄叶突变体sd110的表型分析与基因克隆 | 第25-55页 |
| 2.1 实验材料 | 第25-27页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第25页 |
| 2.1.2 常用化学试剂及试剂盒 | 第25-27页 |
| 2.1.2.1 提取 DNA 主要试剂 | 第25页 |
| 2.1.2.2 聚丙烯酰胺凝胶(Polyacrylamide Gel Electrophoresis，PAGE)试剂 | 第25页 |
| 2.1.2.3 琼脂糖凝胶试剂 | 第25-26页 |
| 2.1.2.4 质粒提取试剂 | 第26页 |
| 2.1.2.5 培养基相关试剂 | 第26页 |
| 2.1.2.6 提取原生质相关试剂 | 第26-27页 |
| 2.1.2.7 GUS 染液 | 第27页 |
| 2.1.2.8 菌株和载体 | 第27页 |
| 2.1.2.9 工具酶 | 第27页 |
| 2.1.2.10 其他试剂及试剂盒 | 第27页 |
| 2.2 仪器设备 | 第27-28页 |
| 2.3 实验方法 | 第28-38页 |
| 2.3.1 农艺性状调查 | 第28页 |
| 2.3.2 叶脉数目统计 | 第28页 |
| 2.3.3 叶片下表皮观察 | 第28-29页 |
| 2.3.4 F_2群体构建与遗传分析 | 第29页 |
| 2.3.5 基因定位 | 第29-34页 |
| 2.3.6 载体构建 | 第34-36页 |
| 2.3.7 亚细胞定位 | 第36-37页 |
| 2.3.8 基因功能验证 | 第37-38页 |
| 2.4 结果与分析 | 第38-53页 |
| 2.4.1 突变体表型分析 | 第38-40页 |
| 2.4.2 叶片细胞学观察 | 第40-41页 |
| 2.4.3 突变体的遗传分析 | 第41-42页 |
| 2.4.4 突变体sd110的图位克隆 | 第42-43页 |
| 2.4.5 候选基因测序及序列分析 | 第43-45页 |
| 2.4.6 生物信息学分析 | 第45页 |
| 2.4.7 同源蛋白序列比对和进化分析 | 第45-47页 |
| 2.4.8 目的基因的功能验证 | 第47-49页 |
| 2.4.9 表达模式分析 | 第49-51页 |
| 2.4.10 RPS3a亚细胞定位 | 第51-53页 |
| 2.5 结论与讨论 | 第53-55页 |
| 2.5.1 讨论 | 第53-54页 |
| 2.5.2 下一步工作计划 | 第54-55页 |
| 第三章 水稻窄叶突变体F2-195的表型分析与功能研究 | 第55-75页 |
| 3.1 实验材料 | 第55页 |
| 3.1.1 植物材料 | 第55页 |
| 3.1.2 常用化学试剂及试剂盒 | 第55页 |
| 3.2 仪器设备 | 第55页 |
| 3.3 实验方法 | 第55-58页 |
| 3.3.1 农艺性状调查 | 第55页 |
| 3.3.2 叶脉数目统计 | 第55页 |
| 3.3.3 叶片下表皮观察 | 第55页 |
| 3.3.4 叶脉数目统计 | 第55页 |
| 3.3.5 叶片的石蜡切片观察 | 第55-56页 |
| 3.3.6 F_2群体构建与遗传分析 | 第56页 |
| 3.3.7 基因定位 | 第56页 |
| 3.3.8 转录抑制活性鉴定 | 第56-57页 |
| 3.3.9 流式细胞术 | 第57-58页 |
| 3.4 实验结果 | 第58-73页 |
| 3.4.1 突变体表型分析 | 第58-59页 |
| 3.4.2 叶片细胞学观察 | 第59-60页 |
| 3.4.3 突变体F2-195的遗传分析 | 第60-61页 |
| 3.4.4 突变体F2-195的图位克隆 | 第61-63页 |
| 3.4.5 候选基因分析 | 第63页 |
| 3.4.6 NAL2/3 基因的组织表达模式 | 第63-64页 |
| 3.4.7 突变体细胞分裂速率减慢 | 第64-66页 |
| 3.4.8 突变体中S和G2/M期细胞数量减少 | 第66-68页 |
| 3.4.9 OsWOX3转录抑制活性鉴定 | 第68-70页 |
| 3.4.10 nal2/3 位于nal1的上游 | 第70-71页 |
| 3.4.11 nal2/3 位于sd110的下游 | 第71-73页 |
| 3.5 讨论 | 第73-75页 |
| 参考文献 | 第75-81页 |
| 附录 | 第81-83页 |
| 致谢 | 第83-84页 |
| 作者简历 | 第84页 |
