| 致谢 | 第4-8页 |
| 摘要 | 第8-9页 |
| 1 文献综述 | 第9-21页 |
| 1.1 植物干旱胁迫生理及分子机制 | 第9-10页 |
| 1.1.1 干旱对小麦正常生长的危害 | 第9页 |
| 1.1.2 干旱对小麦光合作用的影响 | 第9-10页 |
| 1.2 高通量测序技术在植物抗逆机制研究中的应用 | 第10-12页 |
| 1.2.1 高通量测序技术的发展 | 第10页 |
| 1.2.2 RNA-seq在植物抗逆机制研究中的应用 | 第10-12页 |
| 1.3 非编码RNA | 第12-14页 |
| 1.3.1 小RNA和在植物抗逆中的原理 | 第12-13页 |
| 1.3.2 长非编码RNA的定义和功能 | 第13-14页 |
| 1.3.3 长非编码RNA在植物中特别是抗逆性研究中应用 | 第14页 |
| 1.4 circRNA | 第14-21页 |
| 1.4.1 circRNA的定义 | 第14-15页 |
| 1.4.2 circRNA的功能 | 第15-16页 |
| 1.4.3 circRNA的发展过程 | 第16-17页 |
| 1.4.4 基于RNA-seq的circRNA不同算法的比较 | 第17-19页 |
| 1.4.5 植物circRNA在抗逆胁迫中的可能作用 | 第19-20页 |
| 1.4.6 本研究的技术路线 | 第20-21页 |
| 2 引言 | 第21-22页 |
| 3 材料与方法 | 第22-28页 |
| 3.1 试验设计 | 第22页 |
| 3.2 试验仪器与试剂 | 第22-24页 |
| 3.2.1 主要试验仪器 | 第22-23页 |
| 3.2.2 主要试剂 | 第23页 |
| 3.2.3 主要数据库和分析工具 | 第23页 |
| 3.2.4 实时定量PCR引物 | 第23-24页 |
| 3.3 试验方法 | 第24-28页 |
| 3.3.1 相对水含量的测定 | 第24页 |
| 3.3.2 超氧化物歧化酶（SOD）活性的测定 | 第24-25页 |
| 3.3.3 过氧化氢酶（CAT）活性的测定 | 第25页 |
| 3.3.4 过氧化物酶（POD）活性的测定 | 第25页 |
| 3.3.5 过氧化氢（H2O2）含量的测定 | 第25页 |
| 3.3.6 丙二醛（MDA）含量的测定 | 第25页 |
| 3.3.7 总RNA提取和质控 | 第25-26页 |
| 3.3.8 circRNA建库和测序 | 第26页 |
| 3.3.9 circRNA的鉴定 | 第26-27页 |
| 3.3.10 预测circ RNA的miRNA靶标、miRNA的mRNA靶标和功能注释 | 第27页 |
| 3.3.11 验证差异化表达的circ RNA | 第27-28页 |
| 4 结果与讨论 | 第28-38页 |
| 4.1 生理指标 | 第28-30页 |
| 4.1.1 干旱对小麦幼苗叶片生长的影响 | 第28页 |
| 4.1.2 干旱对小麦幼苗叶片中相对水含量的影响 | 第28-29页 |
| 4.1.3 干旱对小麦幼苗叶片中MDA和H2O2的影响 | 第29页 |
| 4.1.4 干旱对小麦幼苗叶片中抗氧化酶活性的影响 | 第29-30页 |
| 4.2 小麦幼苗叶片circRNA分析 | 第30-35页 |
| 4.2.1 小麦幼苗叶片总RNA质控结果 | 第30-31页 |
| 4.2.2 小麦幼苗叶片circRNA的筛选和鉴定 | 第31-32页 |
| 4.2.3 干旱条件下小麦幼苗叶片circRNA的差异化表达模式 | 第32页 |
| 4.2.4 小麦幼苗叶片circRNA作为miRNA“海绵”的调控功能推断 | 第32-34页 |
| 4.2.5 小麦幼苗叶片中差异化表达circRNA的验证 | 第34-35页 |
| 4.3 预测mRNA的功能分类 | 第35-38页 |
| 5 讨论 | 第38-41页 |
| 5.1 干旱对小麦正常生长的危害 | 第38页 |
| 5.2 干旱下小麦幼苗叶片circRNA与其他高等植物circRNA的对比 | 第38-39页 |
| 5.3 干旱下小麦幼苗叶片circRNA对其miRNA的海绵作用 | 第39页 |
| 5.4 干旱下小麦幼苗叶片circRNA对光合作用网络和激素调控网络的应答 | 第39-41页 |
| 参考文献 | 第41-52页 |
| 英文摘要 | 第52-53页 |
| 附表 | 第54-79页 |
