中文摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-7页 |
英文缩写表 | 第8-13页 |
第一章 绪论 | 第13-41页 |
1.1 植物响应低温胁迫的研究进展 | 第13-24页 |
1.1.1 植物应对低温胁迫的生理响应 | 第14-19页 |
1.1.2 植物响应低温胁迫的分子机制 | 第19-24页 |
1.2 表观遗传学与植物逆境应答 | 第24-35页 |
1.2.1 表观遗传学概念及分子机制 | 第24-32页 |
1.2.2 植物逆境应答的表观遗传机制 | 第32-35页 |
1.3 高山离子芥抗冻性研究进展 | 第35-36页 |
1.4 乙醇脱氢酶研究进展 | 第36-39页 |
1.5 本研究的目的与意义 | 第39-41页 |
第二章 材料和方法 | 第41-58页 |
2.1 实验材料 | 第41-42页 |
2.1.1 植物材料 | 第41页 |
2.1.2 载体和菌株 | 第41页 |
2.1.3 实验相关的主要药品和试剂 | 第41-42页 |
2.2 实验方法 | 第42-51页 |
2.2.1 植物材料的培养和处理方法 | 第42-43页 |
2.2.2 流式细胞仪估算高山离子芥基因组大小 | 第43页 |
2.2.3 高山离子芥半致死温度(LT50)检测 | 第43-44页 |
2.2.4 Western blot分析 | 第44页 |
2.2.5 全基因组甲基化检测方法及分析 | 第44-45页 |
2.2.6 CbADH1基因的克隆及生物信息学分析 | 第45-46页 |
2.2.7 半定量和定量PCR | 第46-47页 |
2.2.8 ADH酶活分析 | 第47页 |
2.2.9 ADH1基因的组织表达分析 | 第47页 |
2.2.10 高山离子芥CbADH1的亚细胞定位 | 第47页 |
2.2.11 拟南芥ADH1基因T-DNA插入突变体鉴定 | 第47-48页 |
2.2.12 转基因株系抗冻实验 | 第48页 |
2.2.13 共定位和双分子荧光互补(BiFC)实验 | 第48-49页 |
2.2.14 酵母双杂交实验 | 第49页 |
2.2.15 染色质免疫共沉淀分析 | 第49-50页 |
2.2.16 重亚硫酸盐测序分析 | 第50页 |
2.2.17 代谢组实验及分析 | 第50-51页 |
2.3 实验相关的引物信息 | 第51-58页 |
第三章 结果与讨论 | 第58-112页 |
3.1 高山离子芥全基因组甲基化和组蛋白修饰变化模式 | 第58-71页 |
3.1.1 高山离子芥基因组大小测定 | 第58页 |
3.1.2 TSA对高山离子芥抗冻性的影响 | 第58-59页 |
3.1.3 自然生境下高山离子芥组蛋白修饰和DNA甲基化变化特征 | 第59-62页 |
3.1.4 高山离子芥冷冻胁迫下DNA甲基化模式变化 | 第62-66页 |
3.1.5 冷冻胁迫下受DNA甲基化调控的基因筛选及验证 | 第66-68页 |
3.1.6 讨论 | 第68-71页 |
3.2 高山离子芥乙醇脱氢酶CbADH1功能研究 | 第71-99页 |
3.2.1 高山离子芥乙醇脱氢酶基因(CbADH1)克隆及序列分析 | 第71-77页 |
3.2.2 高山离子芥CbADH1亚细胞定位及组织特异性表达 | 第77-80页 |
3.2.3 高山离子芥CbADH1响应多种非生物胁迫 | 第80-84页 |
3.2.4 T-DNA插入突变体adh1纯合体筛选及转基因植株构建 | 第84-85页 |
3.2.5 CbADH1过表达增强转基因株系抗冻能力 | 第85-89页 |
3.2.6 CbADH1与其它蛋白互作分析 | 第89-92页 |
3.2.7 冷胁迫下CbADH1表观遗传修饰变化规律 | 第92-95页 |
3.2.8 高山离子芥CbADH1基因DNA甲基化发生位点 | 第95-96页 |
3.2.9 讨论 | 第96-99页 |
3.3 拟南芥AtADH1对低温胁迫的响应 | 第99-112页 |
3.3.1 低温诱导AtADH1表达 | 第99-100页 |
3.3.2 adh1突变体冷耐受能力分析 | 第100-101页 |
3.3.3 CBFs对adh1突变体冷胁迫应答的影响 | 第101-102页 |
3.3.4 冻处理下adh1突变体差异代谢物分析 | 第102-110页 |
3.3.5 讨论 | 第110-112页 |
第四章 结论与展望 | 第112-114页 |
4.1 结论 | 第112页 |
4.2 展望 | 第112-114页 |
参考文献 | 第114-143页 |
附表 | 第143-150页 |
在学期间研究成果 | 第150-151页 |
致谢 | 第151页 |