| 中文摘要 | 第2-4页 |
| ABSTRACT | 第4-6页 |
| 中英文缩略词表 | 第7-11页 |
| 引言 | 第11-14页 |
| 实验一：腺性膀胱炎大鼠模型制备 | 第14-29页 |
| 1. 实验材料 | 第14-17页 |
| 1.1 实验动物 | 第14-15页 |
| 1.2 实验试剂 | 第15-17页 |
| 1.3 实验主要器材 | 第17页 |
| 2. 实验方法 | 第17-21页 |
| 2.1 实验分组 | 第17-18页 |
| 2.2 动物模型的建立 | 第18-19页 |
| 2.3 实验动物基本观察 | 第19页 |
| 2.4 膀胱组织处理 | 第19-21页 |
| 2.5 统计方法 | 第21页 |
| 3. 实验结果 | 第21-24页 |
| 3.1 大鼠的一般情况 | 第21页 |
| 3.2 大鼠体重、饮食量、饮水量的测量结果 | 第21-22页 |
| 3.3 膀胱大体病理观察结果 | 第22-23页 |
| 3.4 膀胱黏膜显微镜下病理改变 | 第23-24页 |
| 4. 分析讨论 | 第24-28页 |
| 4.1 腺性膀胱炎的诊断 | 第24-25页 |
| 4.2 大肠埃希杆菌造模选择依据 | 第25-26页 |
| 4.3 腺性膀胱炎造模现状 | 第26-28页 |
| 5. 结论 | 第28-29页 |
| 实验二 基于腺性膀胱炎大鼠模型研究八正散影响膀胱β_3-AR、Ki-67、p53及相关细胞因子作用机制 | 第29-71页 |
| 1. 实验材料 | 第29-33页 |
| 1.1 实验动物 | 第29页 |
| 1.2 实验药物 | 第29-31页 |
| 1.3 实验试剂 | 第31-33页 |
| 1.4 实验主要仪器 | 第33页 |
| 2. 实验方法 | 第33-39页 |
| 2.1 动物分组 | 第33页 |
| 2.2 腺性膀胱炎大鼠造模 | 第33-34页 |
| 2.3 模型干预给药 | 第34-35页 |
| 2.4 实验基本情况观察 | 第35-36页 |
| 2.5 标本采集及处理 | 第36-38页 |
| 2.6 统计方法 | 第38-39页 |
| 3. 实验结果 | 第39-48页 |
| 3.1 大鼠一般情况 | 第39-40页 |
| 3.2 大鼠膀胱组织形态学观察 | 第40-43页 |
| 3.3 免疫组化实验结果 | 第43-48页 |
| 4. 分析讨论 | 第48-70页 |
| 4.1 大鼠一般情况 | 第48页 |
| 4.2 大鼠膀胱组织大体及病理形态学观察 | 第48-50页 |
| 4.3 细胞因子(IL-6、IL-17、TGF-β_1) | 第50-59页 |
| 4.4 膀胱β_3-AR | 第59-62页 |
| 4.5 Ki67与P53 | 第62-70页 |
| 5. 结论 | 第70-71页 |
| 5.1 实验模型评价 | 第70页 |
| 5.2 实验结论 | 第70-71页 |
| 主要创新点 | 第71-72页 |
| 存在问题和展望 | 第72-73页 |
| 致谢 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-84页 |
| 附录综述：八正散现代泌尿临床治疗应用概述 | 第84-95页 |
| 参考文献 | 第92-95页 |
| 附件1：大鼠膀胱病理图片展示 | 第95-96页 |
| 附件2：显微图像部分展示 | 第96-102页 |
| 在读期间公开发表的学术论文、专著及科研成果 | 第102-103页 |