首页--农业科学论文--园艺论文--果树园艺论文--热带及亚热带果类论文--橄榄(青果)、乌榄论文

橄榄(Canarium album (Lour.) Reausch.)金丝桃苷的测定及生物合成相关基因的克隆与表达分析

英文缩略词表第9-10页
摘要第10-12页
ABSTRACT第12-13页
第一章 前言第14-20页
    1 酚类化合物第14-15页
        1.1 植物酚类化合物简介第14-15页
        1.2 酚类化合物与橄榄涩味第15页
    2 金丝桃苷第15-18页
        2.1 金丝桃苷简介第15-16页
        2.2 金丝桃苷的代谢途径第16页
        2.3 果实中金丝桃苷的研究进展第16-17页
        2.4 金丝桃苷生物合成途径中相关酶的研究第17-18页
    3 内参基因的意义与选择第18-19页
    4 该课题研究的目的和意义第19页
    5 研究内容第19-20页
第二章 橄榄果实发育成熟过程中金丝桃苷含量的变化第20-25页
    1 材料与方法第20-22页
        1.1 实验材料第20-21页
            1.1.1 植物材料第20页
            1.1.2 试剂药品第20-21页
        1.2 仪器设备第21页
        1.3 实验方法第21-22页
            1.3.1 多酚的提取与纯化第21页
            1.3.2 标准溶液的配置第21页
            1.3.3 色谱条件第21-22页
    2 结果与分析第22-24页
        2.1 标准曲线的绘制第22页
        2.2 不同橄榄品种(系)果实中金丝桃苷含量的变化第22-23页
        2.3 不同类型橄榄成熟果实中金丝桃苷含量的差异第23-24页
    3 讨论第24-25页
第三章 四个橄榄内参基因的克隆与筛选第25-38页
    1 材料与方法第25-31页
        1.1 植物材料第25-26页
        1.2 试剂药品第26页
        1.3 仪器设备第26页
        1.4 实验方法第26-31页
            1.4.1 橄榄果实总RNA的提取与检测第26-27页
            1.4.2 橄榄果实总RNA逆转录第27页
            1.4.3 保守序列引物设计第27-28页
            1.4.4 反应体系第28页
            1.4.5 PCR扩增条件第28页
            1.4.6 PCR产物的回收、连接、转化和测序第28-30页
            1.4.7 qRT-PCR引物设计与筛选第30页
            1.4.8 qRT-PCR运行程序第30页
            1.4.9 内参基因表达数据的分析第30-31页
    2 结果与分析第31-36页
        2.1 橄榄果肉总RNA提取第31页
        2.2 内参基因的克隆第31-32页
        2.3 内参基因qRT-PCR引物第32-33页
        2.4 候选内参基因在样本内的表达特性第33-34页
        2.5 内参基因稳定性评价第34-36页
            2.5.1 Bestkeeper分析第34-35页
            2.5.2 geNorm分析第35-36页
            2.5.3 NormFinder分析第36页
        2.6 内参基因的选择第36页
    3 讨论第36-38页
第四章 橄榄果肉中F3'H、F3H、FLS基因的克隆及表达分析第38-72页
    1 材料与方法第38-46页
        1.1 植物材料第38页
        1.2 试剂药品第38-39页
        1.3 仪器设备第39页
        1.4 实验方法第39-46页
            1.4.1 橄榄果实总RNA提取与检测第39页
            1.4.2 橄榄果实总RNA逆转录第39页
            1.4.3 引物设计第39-40页
            1.4.4 保守区cDNA的PCR扩增第40-41页
            1.4.5 3'和5'RACE第41-44页
            1.4.6 基因的全长验证第44页
            1.4.7 基因组DNA克隆第44-46页
            1.4.8 生物信息学分析第46页
            1.4.9 qRT-PCR引物设计与筛选第46页
            1.4.10 qRT-PCR运行程序第46页
    2 结果与分析第46-68页
        2.1 F3'H的克隆第47-53页
            2.1.1 F3'H保守序列的获取第47页
            2.1.2 F3'H3'和5'RACE序列的获取第47-48页
            2.1.3 F3'H cDNA和gDNA全长序列获取第48页
            2.1.5 橄榄CaF3'H的序列分析第48-52页
            2.1.6 橄榄CaF3'H编码氨基酸的基本特征第52页
            2.1.7 橄榄CaF3'H基因gDNA和cDNA的比较第52-53页
        2.2 F3H的克隆第53-59页
            2.2.1 F3H保守序列的获取第53页
            2.2.2 F3H3'和5'RACE序列的获取第53-54页
            2.2.3 F3H cDNA和gDNA全长序列获取第54-55页
            2.2.5 橄榄CaF3H的序列分析第55-58页
            2.2.6 橄榄CaF3H编码氨基酸的基本特征第58页
            2.2.7 橄榄CaF3H基因gDNA和cDNA的比较第58-59页
        2.3 FLS的克隆第59-64页
            2.3.1 FLS保守序列的获取第59页
            2.3.2 FLS3'和5'RACE序列的获取第59-60页
            2.3.3 FLS cDNA和gDNA全长序列获取第60页
            2.3.5 橄榄CaFLS的序列分析第60-63页
            2.3.6 橄榄CaFLS编码氨基酸的基本特征第63-64页
            2.3.7 橄榄CaFLS基因gDNA和cDNA的比较第64页
        2.4 目的基因在样本内的表达特性第64-65页
        2.5 目的基因的相对表达量第65-68页
        2.6 相关性分析第68页
    3 讨论第68-72页
        3.1 F3'H、F3H、FLS三个基因的序列信息第68-70页
        3.2 三个基因的表达趋势第70页
        3.3 相关性分析第70-72页
第五章 总结与展望第72-75页
    1 总结第72-73页
    2 展望第73页
    3 创新点第73-75页
参考文献第75-83页
附录A第83-84页
附录B第84-87页
附录C第87-91页
硕士学习期间发表的论文第91-92页
致谢第92页

论文共92页,点击 下载论文
上一篇:李果实苹果酸转运体的克隆表达及其有机酸的关联性分析
下一篇:橄榄果实品质特性及其代谢组学的初步研究