| 摘要 | 第4-8页 |
| Abstract | 第8-12页 |
| 中英文对照表 | 第16-17页 |
| 第1章 绪论 | 第17-47页 |
| 1.1 氧化应激 | 第17-28页 |
| 1.1.1 概述 | 第17页 |
| 1.1.2 活性氧的来源及生化性质 | 第17-21页 |
| 1.1.3 氧化应激对信号转导的作用 | 第21-22页 |
| 1.1.4 氧化应激与内皮细胞功能障碍 | 第22-23页 |
| 1.1.5 氧化应激在心血管疾病发生发展过程中的作用 | 第23-27页 |
| 1.1.6 抗氧化治疗 | 第27-28页 |
| 1.2 MicroRNA | 第28-38页 |
| 1.2.1 非编码RNA | 第28-29页 |
| 1.2.2 miRNA生成及功能 | 第29-31页 |
| 1.2.3 miRNA与心血管系统的发育 | 第31-33页 |
| 1.2.4 miRNA与心血管疾病 | 第33-35页 |
| 1.2.5 microRNA-210 | 第35-38页 |
| 1.3 细胞凋亡 | 第38-47页 |
| 1.3.1 概述 | 第38-39页 |
| 1.3.2 Bcl-2 蛋白家族 | 第39-41页 |
| 1.3.3 内源性凋亡途径 | 第41-42页 |
| 1.3.4 外源性凋亡途径 | 第42-44页 |
| 1.3.5 氧化应激与凋亡 | 第44-47页 |
| 第2章 材料和方法 | 第47-57页 |
| 2.1 实验器材 | 第47-48页 |
| 2.2 实验试剂 | 第48-49页 |
| 2.3 实验方法 | 第49-57页 |
| 2.3.1 细胞培养 | 第49页 |
| 2.3.2 慢病毒感染细胞 | 第49页 |
| 2.3.3 DAPI染色 | 第49-50页 |
| 2.3.4 MTT法检测细胞生存率 | 第50页 |
| 2.3.5 ATP检测细胞生存率 | 第50-51页 |
| 2.3.6 Annexin V-7AAD双染检测细胞凋亡 | 第51页 |
| 2.3.7 细胞中总RNA的提取 | 第51-52页 |
| 2.3.8 microRNA逆转录 | 第52-53页 |
| 2.3.9 mRNA逆转录 | 第53页 |
| 2.3.10 实时定量PCR检测 | 第53-54页 |
| 2.3.11 细胞中总蛋白的提取 | 第54-55页 |
| 2.3.12 BCA蛋白定量试剂盒检测蛋白浓度 | 第55页 |
| 2.3.13 煮蛋白 | 第55页 |
| 2.3.14 Western blot | 第55-56页 |
| 2.3.15 统计学处理 | 第56-57页 |
| 第3章 实验结果 | 第57-83页 |
| 3.1 miR-210在H_2O_2诱导的HUVECs细胞凋亡中的作用及机制 | 第57-76页 |
| 3.1.1 H_2O_2抑制HUVECs细胞的增殖并诱导HUVECs细胞凋亡 | 第58-60页 |
| 3.1.2 H_2O_2在HUVECs细胞中诱导miR-210 表达上调 | 第60-62页 |
| 3.1.3 miR-210抑制H_2O_2诱导的HUVECs细胞凋亡 | 第62-68页 |
| 3.1.4 miR-210与CASP8AP2通路在H_2O_2诱导的HUVECs凋亡中的作用 | 第68-72页 |
| 3.1.5 miR-210与BNIP3通路在H_2O_2诱导的HUVECs凋亡中的作用 | 第72-76页 |
| 3.2 miR-210在H_2O_2诱导的大鼠H9c2心肌细胞凋亡中的作用及机制 | 第76-83页 |
| 3.2.1 miR-210与CASP8AP2通路在H_2O_2诱导的大鼠H9c2细胞凋亡中的作用 | 第76-80页 |
| 3.2.2 miR-210与BNIP3通路在H_2O_2诱导的大鼠H9c2细胞凋亡中的作用 | 第80-83页 |
| 第4章 讨论 | 第83-89页 |
| 4.1 miR-210抑制氧化应激条件下的HUVECs细胞凋亡 | 第83-85页 |
| 4.2 miR-210通过下调CASP8AP2通路参与调节外源性凋亡途径 | 第85页 |
| 4.3 miR-210通过下调BNIP3通路参与调节内源性凋亡途径 | 第85-89页 |
| 第5章 结论 | 第89-91页 |
| 参考文献 | 第91-115页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第115-117页 |
| 致谢 | 第117页 |
