| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 缩略词表(Abbreviation) | 第10-12页 |
| 1 前言 | 第12-22页 |
| 1.1 研究问题的由来 | 第12-13页 |
| 1.2 文献综述 | 第13-21页 |
| 1.2.1 猪链球菌病流行病学 | 第13-14页 |
| 1.2.2 猪链球菌相关毒力因子 | 第14页 |
| 1.2.3 猪链球菌病临床症状和病理变化 | 第14-15页 |
| 1.2.4 炎症风暴 | 第15-16页 |
| 1.2.5 树突状细胞 | 第16-19页 |
| 1.2.6 T淋巴细胞 | 第19页 |
| 1.2.7 CD4+T细胞 | 第19-21页 |
| 1.3 研究目的和意义 | 第21-22页 |
| 2 材料与方法 | 第22-32页 |
| 2.1 实验材料 | 第22页 |
| 2.1.1 实验菌株 | 第22页 |
| 2.1.2 实验动物 | 第22页 |
| 2.2 主要实验试剂 | 第22-23页 |
| 2.3 主要实验仪器 | 第23-24页 |
| 2.4 其他试剂的配制 | 第24页 |
| 2.5 实验方法 | 第24-32页 |
| 2.5.1 猪链球菌的培养和处理 | 第24-25页 |
| 2.5.2 猪外周血MoDC的分离和诱导培养 | 第25-27页 |
| 2.5.3 猪外周血MoDC的流式鉴定 | 第27页 |
| 2.5.4 SC19 刺激的猪外周血MoDC表型流式分析 | 第27页 |
| 2.5.5 SC19 刺激的猪外周血MoDC吞噬能力检测 | 第27-28页 |
| 2.5.6 SC19 感染的猪外周血MoDC刺激T淋巴细胞增殖能力检测 | 第28页 |
| 2.5.7 SC19 刺激的猪外周血MoDC分泌细胞因子的检测 | 第28-30页 |
| 2.5.8 猪外周血源CD4+T细胞的分选与纯度鉴定 | 第30页 |
| 2.5.9 SC19 刺激猪外周血MoDC诱导CD4+T细胞定向分化流式分析 | 第30-31页 |
| 2.5.10 SC19 刺激猪外周血MoDC诱导CD4+T细胞分泌细胞因子的检测 | 第31页 |
| 2.5.11 实验数据处理和分析 | 第31-32页 |
| 3 结果与分析 | 第32-41页 |
| 3.1 猪外周血单个核细胞层的分离和MoDC的培养 | 第32-34页 |
| 3.2 猪MoDC的流式鉴定 | 第34页 |
| 3.3 SC19 刺激MoDC后表型流式分析 | 第34-35页 |
| 3.4 SC19 刺激MoDC后吞噬能力变化 | 第35-36页 |
| 3.5 SC19 感染的MoDC刺激T淋巴细胞增殖能力 | 第36-37页 |
| 3.6 SC19 刺激的MoDC分泌的细胞因子 | 第37-38页 |
| 3.7 免疫磁珠分选的猪外周血源CD4+T细胞的纯度 | 第38-39页 |
| 3.8 SC19 刺激MoDC诱导CD4+T细胞定向分化流式分析 | 第39-40页 |
| 3.9 SC19 刺激MoDC和CD4+T细胞分泌的细胞因子 | 第40-41页 |
| 4 讨论 | 第41-45页 |
| 4.1 猪链球菌与猪链球菌病 | 第41页 |
| 4.2 猪外周血MoDC的培养 | 第41-42页 |
| 4.3 SC19 刺激对猪MoDC细胞表型影响 | 第42-43页 |
| 4.4 SC19 刺激对猪MoDC吞噬功能的影响 | 第43页 |
| 4.5 SC19 感染对猪MoDC刺激T淋巴细胞增殖能力的影响 | 第43-44页 |
| 4.6 SC19 刺激的MoDC对CD4+T细胞定向分化的影响 | 第44页 |
| 4.7 DC在猪链球菌感染导致炎症风暴过程中的作用分析 | 第44-45页 |
| 5 结论 | 第45-47页 |
| 参考文献 | 第47-54页 |
| 致谢 | 第54页 |
