| 主要中英文缩略词对照表 | 第6-7页 |
| 中文摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 引言 | 第10-16页 |
| 1. 反流与食管黏膜急慢性炎症 | 第10页 |
| 2. n-3 PUFAs减轻大鼠RE食管黏膜损伤的研究及存在的问题 | 第10-11页 |
| 3. DHA与EPA的抗炎症作用特点 | 第11-12页 |
| 4. 来自n-3 PUFAs干预肿瘤研究的提示 | 第12-13页 |
| 5. 单独DHA干预对大鼠RE模型的影响及潜在机制 | 第13-16页 |
| 材料与方法 | 第16-23页 |
| 1. 实验材料 | 第16-18页 |
| 1.1 实验动物及饲料 | 第16页 |
| 1.2 实验用DHA、BOC-2 | 第16页 |
| 1.3 主要实验试剂及仪器设备 | 第16-18页 |
| 2. 实验方法 | 第18-22页 |
| 2.1 实验分组及实验模型建立 | 第18-19页 |
| 2.2 术后处理 | 第19页 |
| 2.3 标本采集及保存 | 第19-20页 |
| 2.4 观察指标及判定标准 | 第20-21页 |
| 2.5 ELISA法定量检测食管组织Rv D1、MPO、p22phox、TLR4、p-p38MAPK | 第21-22页 |
| 3. 统计学方法 | 第22-23页 |
| 实验结果 | 第23-35页 |
| 1. 各组大鼠存活情况 | 第23页 |
| 2. 各组大鼠食管总体炎症程度 | 第23-24页 |
| 3. 各组大鼠食管大体肉眼观改变 | 第24-25页 |
| 4. 各组大鼠食管组织HE染色改变 | 第25-27页 |
| 5. 各组大鼠食管Rv D1表达情况 | 第27-28页 |
| 6. 各组大鼠食管MPO表达情况 | 第28-29页 |
| 7. 各组大鼠食管p-p38MAPK表达情况 | 第29-30页 |
| 8. 各组大鼠食管p22phox表达情况 | 第30-31页 |
| 9. 各组大鼠食管TLR4表达情况 | 第31-32页 |
| 10. Rv D1与各指标的相关性分析 | 第32-35页 |
| 讨论 | 第35-44页 |
| 1. 急性RE成模观察时间点的选择 | 第35页 |
| 2. 各造模组食管大体/光镜下病理的改变 | 第35-38页 |
| 3. 各组Rv D1水平变化 | 第38-39页 |
| 4. DHA及Rv D1的作用机制 | 第39-44页 |
| 4.1 抑制中性粒细胞聚集 | 第39-41页 |
| 4.2 抑制p38MAPK磷酸化 | 第41页 |
| 4.3 减少氧化应激反应 | 第41-42页 |
| 4.4 阻碍Toll样受体通路 | 第42-44页 |
| 全文结论 | 第44-45页 |
| 主要参考文献 | 第45-50页 |
| 综述一：消退素D1及其在肝脏疾病中的作用 | 第50-60页 |
| 参考文献 | 第57-60页 |
| 综述二：肌肉减少症的药物治疗 | 第60-71页 |
| 参考文献 | 第67-71页 |
| 致谢 | 第71页 |
