| 中文摘要 | 第9-11页 |
| 英文摘要 | 第11-12页 |
| 中英文缩略语表 | 第13-14页 |
| 第—部分 小鼠结肠炎癌转化的基因表达谱数据分析 | 第14-80页 |
| 引言 | 第15-17页 |
| 材料与方法 | 第17-23页 |
| 一、实验材料 | 第17页 |
| 二、主要仪器设备 | 第17-18页 |
| 三、实验方法 | 第18-23页 |
| 结果 | 第23-75页 |
| 1. 成功建立AOM-DSS小鼠模型 | 第23-24页 |
| 2. 进行基因表达谱芯片实验并进行数据分析 | 第24-75页 |
| 2.1. AD3 VS Con | 第25-33页 |
| 2.2. AD3_VS_AD3N | 第33-45页 |
| 2.3. AD3_VS_AD2 | 第45-57页 |
| 2.4. AD4 VS AD3 | 第57-72页 |
| 2.5. 四种分析方法比较 | 第72-75页 |
| 讨论 | 第75-78页 |
| 小结 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-80页 |
| 第二部分 小鼠结肠炎癌转化中的差异基因与干细胞及干细胞微环境基因表达谱数据比较分析 | 第80-112页 |
| 引言 | 第81-84页 |
| 材料方法 | 第84-86页 |
| 一、实验材料 | 第84-85页 |
| 二、实验方法 | 第85-86页 |
| 结果 | 第86-103页 |
| 1. AOM-DSS小鼠模型基因表达谱数据分析 | 第86页 |
| 2. 人结肠隐窝基因表达谱数据分析 | 第86-94页 |
| 3. 人胚胎干细胞基因表达谱数据分析 | 第94-98页 |
| 4. 小鼠结不同EphB2水平细胞的基因表达谱数据分析 | 第98-101页 |
| 5. 小鼠结肠Lgr5-GFP~(high)细胞群基因表达谱数据分析 | 第101-103页 |
| 讨论 | 第103-107页 |
| 小结 | 第107-108页 |
| 参考文献 | 第108-112页 |
| 第三部分 LEF1/TCFs成员在结肠炎相关结直肠癌发生中的作用 | 第112-158页 |
| 引言 | 第113-115页 |
| 材料方法 | 第115-126页 |
| 一、实验材料 | 第115-119页 |
| 二、主要仪器设备 | 第119-120页 |
| 三、实验方法 | 第120-126页 |
| 结果 | 第126-151页 |
| 1. Lefl/Tcfs家族成员在小鼠结肠炎癌转化过程中的差异表达 | 第126-128页 |
| 2. 人的结肠癌发生过程中LEF1和TCF1升高,而TCF3和TCF4降低 | 第128-129页 |
| 3. LEF1/TCFs成员的表达在人IBD样品和小鼠结肠急性炎症中均明显改变 | 第129-131页 |
| 4. Wnt靶基因表达水平在AOM-DSS小鼠模型和人结直肠癌中都有改变,并且与LEF1/TCFs成员具有相关性 | 第131-136页 |
| 5. Lefl/Tcfs成员在APC~(Min)小鼠中的改变与在AOM-DSS模型中的改变不同 | 第136-137页 |
| 6. TCF1和LEF1的表达影响结直肠癌干细胞的生物学功能 | 第137-143页 |
| 7. LEF1和TCF1介导肿瘤干细胞细胞的耐药 | 第143-146页 |
| 8. MiRNAs在结直肠癌发生过程中调节LEF1/TCFs的表达水平 | 第146-151页 |
| 讨论 | 第151-154页 |
| 小结 | 第154-155页 |
| 参考文献 | 第155-158页 |
| 附表1 | 第158-172页 |
| 附表2 | 第172-184页 |
| 基金资助 | 第184-185页 |
| 在读期间发表与待发表论文 | 第185-186页 |
| 文献综述1 | 第186-206页 |
| 参考文献 | 第200-206页 |
| 文献综述2 | 第206-219页 |
| 参考文献 | 第215-219页 |
| 致谢 | 第219-220页 |
| 个人简历 | 第220-223页 |
