| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第16-30页 |
| 1.1 层层自组装技术简介 | 第16页 |
| 1.2 层层自组装技术的方法 | 第16-20页 |
| 1.2.1 浸渍自组装 | 第17-18页 |
| 1.2.2 旋涂自组装 | 第18-19页 |
| 1.2.3 喷涂自组装 | 第19-20页 |
| 1.3 蛋白质吸附简介 | 第20-21页 |
| 1.3.1 蛋白质吸附相互作用力 | 第20-21页 |
| 1.3.2 自组装技术在蛋白质吸附上的应用 | 第21页 |
| 1.4 电泳技术简介 | 第21-23页 |
| 1.4.1 变性电泳 | 第22页 |
| 1.4.2 非变性电泳 | 第22-23页 |
| 1.5 免疫检测技术简介 | 第23-27页 |
| 1.5.1 酶联免疫吸附试验(ELISA) | 第23页 |
| 1.5.2 常用ELISA技术类型 | 第23-26页 |
| 1.5.3 ELISA技术应用 | 第26-27页 |
| 1.6 课题研究意义、目的与内容 | 第27-30页 |
| 1.6.1 研究意义与目的 | 第27页 |
| 1.6.2 课题研究内容 | 第27-30页 |
| 第二章 聚电解质多层膜的制备及性质研究 | 第30-42页 |
| 2.1 引言 | 第30页 |
| 2.2 主要试剂和仪器 | 第30-31页 |
| 2.2.1 主要试剂 | 第30-31页 |
| 2.2.2 主要仪器 | 第31页 |
| 2.3 实验部分 | 第31-35页 |
| 2.3.1 聚电解质多层膜的制备 | 第31-32页 |
| 2.3.2 聚电解质沉积量及膜厚的确定 | 第32页 |
| 2.3.3 聚电解质多层膜稳定性的测试 | 第32-33页 |
| 2.3.4 CA及LbL-CA蛋白质吸附量的确定 | 第33页 |
| 2.3.5 电泳驱动作用下蛋白质吸附量 | 第33-34页 |
| 2.3.6 电泳驱动下蛋白质结构是否发生变化 | 第34页 |
| 2.3.7 电泳驱动作用下蛋白质泳动量 | 第34-35页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第35-40页 |
| 2.4.1 自组装多层膜的制备及成膜的稳定性试验 | 第35-37页 |
| 2.4.2 CA及LbL-CA对一抗及OVA的吸附 | 第37页 |
| 2.4.3 电泳体系的可行性研究 | 第37-39页 |
| 2.4.4 蛋白质泳动量测定 | 第39-40页 |
| 2.5 本章小结 | 第40-42页 |
| 第三章 电泳流动型ELISA系统的研究 | 第42-52页 |
| 3.1 引言 | 第42页 |
| 3.2 主要试剂和仪器 | 第42-43页 |
| 3.2.1 主要试剂 | 第42-43页 |
| 3.2.2 主要仪器 | 第43页 |
| 3.3 实验部分 | 第43-47页 |
| 3.3.1 模型蛋白IgG电泳流动型ELISA的优化 | 第43-45页 |
| 3.3.2 模型蛋白IgG电泳流动型ELISA灵敏度测试 | 第45-46页 |
| 3.3.3 模型蛋白IgG静态条件下灵敏度测试 | 第46-47页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第47-51页 |
| 3.4.1 电泳流动型ELISA体系图解 | 第47页 |
| 3.4.2 CA及LbL-CA条件的优化 | 第47-48页 |
| 3.4.3 电泳及静态条件下灵敏度测试比较 | 第48-50页 |
| 3.4.4 不同抗原浓度下S/N | 第50-51页 |
| 3.5 本章小结 | 第51-52页 |
| 第四章 电泳流动型ELISA系统对抗原(CRP)的检测 | 第52-64页 |
| 4.1 引言 | 第52页 |
| 4.2 主要试剂和仪器 | 第52-53页 |
| 4.2.1 主要试剂 | 第52-53页 |
| 4.2.2 主要仪器 | 第53页 |
| 4.3 实验部分 | 第53-56页 |
| 4.3.1 蛋白吸附量的确定 | 第53-54页 |
| 4.3.2 CRP电泳流动型ELISA条件优化 | 第54页 |
| 4.3.3 CRP电泳流动型ELISA灵敏度检测 | 第54-55页 |
| 4.3.4 静态条件下PS板上CRP灵敏度测试 | 第55页 |
| 4.3.5 干扰蛋白存在下CRP电泳流动型ELISA | 第55-56页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第56-62页 |
| 4.4.1 LbL-CA蛋白吸附量的确定 | 第56-57页 |
| 4.4.2 电泳流动型ELISA实验条件优化 | 第57页 |
| 4.4.3 不同条件下ELISA灵敏度测试 | 第57-59页 |
| 4.4.4 干扰蛋白存在下CRP灵敏度测试 | 第59-62页 |
| 4.5 本章小结 | 第62-64页 |
| 第五章 纳米微球在电泳体系中的信号放大 | 第64-78页 |
| 5.1 引言 | 第64页 |
| 5.2 主要试剂和仪器 | 第64-65页 |
| 5.2.1 主要试剂 | 第64页 |
| 5.2.2 主要仪器 | 第64-65页 |
| 5.3 实验部分 | 第65-68页 |
| 5.3.1 纳米微球偶联抗体 | 第65-66页 |
| 5.3.2 NP-IgG应用到PS板ELISA的检测 | 第66-67页 |
| 5.3.3 NP-IgG应用到电泳流动型ELISA的检测 | 第67-68页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第68-76页 |
| 5.4.1 偶联机理 | 第68-69页 |
| 5.4.2 偶联条件的优化 | 第69-70页 |
| 5.4.3 封闭剂对纳米微球偶联的影响 | 第70-71页 |
| 5.4.4 NP-IgG应用到PS板的ELISA检测 | 第71-74页 |
| 5.4.5 NP-IgG应用到电泳流动型ELISA的检测 | 第74-76页 |
| 5.5 本章小结 | 第76-78页 |
| 第六章 全文总结与展望 | 第78-80页 |
| 6.1 结论 | 第78-79页 |
| 6.2 展望 | 第79-80页 |
| 参考文献 | 第80-86页 |
| 致谢 | 第86-88页 |
| 研究成果及发表的学术论文 | 第88-90页 |
| 作者和导师简介 | 第90-91页 |
| 北京化工大学专业学位硕士研究生学位论文答辩委员会决议书 | 第91-92页 |
