| 致谢 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 引言 | 第12-31页 |
| 1.1 CADMs家族研究进展 | 第12-25页 |
| 1.1.1 CADMs家族的发现与各成员的表达模式 | 第12-14页 |
| 1.1.2 CADMs家族结构特点 | 第14-18页 |
| 1.1.2.1 CADMs家族胞外结构域 | 第14-17页 |
| 1.1.2.2 CADMs家族胞内结构域 | 第17-18页 |
| 1.1.3 CADMs家族的多种生理功能 | 第18-25页 |
| 1.1.3.1 免疫相关功能 | 第18-19页 |
| 1.1.3.2 神经系统中的作用 | 第19-21页 |
| 1.1.3.3 CADMs在肿瘤中的相关生理作用 | 第21-24页 |
| 1.1.3.4 CADM1与雄性不育和雌性性别发育异常 | 第24-25页 |
| 1.2 RNA可变剪接概述 | 第25-30页 |
| 1.2.1 RNA剪接体的组成 | 第25页 |
| 1.2.2 剪接体的剪接机制 | 第25-27页 |
| 1.2.2.1 剪接相关的内含子保守序列 | 第26页 |
| 1.2.2.2 剪接体的组装与剪接过程 | 第26-27页 |
| 1.2.3 选择性剪接的常见分类 | 第27-28页 |
| 1.2.4 选择性剪接作用的调控因素 | 第28-30页 |
| 1.2.4.1 剪接增强子和剪接沉默子对剪接作用的调控 | 第28-29页 |
| 1.2.4.2 其他影响选择性剪接的因素 | 第29-30页 |
| 1.3 本研究的目的和意义 | 第30-31页 |
| 第二章 材料与方法 | 第31-49页 |
| 2.1 材料 | 第31-32页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第31页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第31页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第31-32页 |
| 2.2 方法 | 第32-49页 |
| 2.2.1 提取草鱼组织总RNA与基因组DNA | 第32-35页 |
| 2.2.1.1 提取草鱼组织总RNA | 第32-34页 |
| 2.2.1.2 提取草鱼基因组DNA | 第34-35页 |
| 2.2.2 草鱼cadm2b cDNA的克隆 | 第35-45页 |
| 2.2.2.1 草鱼脑组织第一链cDNA的合成 | 第35-36页 |
| 2.2.2.2 克隆草鱼cadm2b cDNA引物的设计 | 第36-38页 |
| 2.2.2.3 草鱼cadm2b全长cDNA的克隆 | 第38-42页 |
| 2.2.2.4 PCR产物的凝胶回收 | 第42-43页 |
| 2.2.2.5 制备和转化感受态细胞 | 第43-45页 |
| 2.2.2.6 目的片段的连接 | 第45页 |
| 2.2.3 草鱼cadm2b cDNA蛋白质序列预测及系统进化分析 | 第45页 |
| 2.2.4 草鱼cadm2b在不同组织器官中的表达分析 | 第45-49页 |
| 第三章 实验结果 | 第49-69页 |
| 3.1 草鱼cadm2b cDNA全序列克隆与蛋白结构预测 | 第49-63页 |
| 3.1.1 草鱼cadm2b以及cadm2b转录突变体全长cDNA的克隆 | 第49-60页 |
| 3.1.2 草鱼cadm2b蛋白功能结构预测与聚类分析 | 第60-63页 |
| 3.2 草鱼cadm2b在草鱼成体组织中的表达分析 | 第63-69页 |
| 3.2.1 草鱼cadm2b在成体组织中的半定量检测 | 第63-66页 |
| 3.2.2 草鱼cadm2b在成体草鱼组织中的实时荧光定量分析 | 第66-69页 |
| 3.2.2.1 草鱼cadm2b实时荧光定量引物确定 | 第66-67页 |
| 3.2.2.2 草鱼成体组织中cadm2b与cadm2bX2定量结果 | 第67-69页 |
| 第四章 结果与讨论 | 第69-75页 |
| 4.1 本文研究的主要结果 | 第69-70页 |
| 4.2 草鱼cadm2b四个蛋白亚型可能的功能差异 | 第70-71页 |
| 4.3 草鱼基因组中cadm2b前体mRNA上可能有三个选择性剪接位点 | 第71页 |
| 4.4 草鱼cadm2b多蛋白亚型表达模式原因分析 | 第71-73页 |
| 4.5 草鱼cadm2b基因可能在成体不同组织中介导细胞黏附 | 第73页 |
| 4.6 存在的问题与进一步研究设想 | 第73-75页 |
| 参考文献 | 第75-84页 |
| 附录 | 第84页 |
