| 摘要 | 第10-12页 |
| Abstract | 第12-14页 |
| 缩略词 | 第15-17页 |
| 前言 | 第17-18页 |
| 第一章 文献综述 | 第18-41页 |
| 一 射精行为的描述 | 第18页 |
| 二 射精中枢神经生理学机制 | 第18-29页 |
| 1 中枢神经递质与射精 | 第18-24页 |
| 1.1 儿茶酚胺系统 | 第19-20页 |
| 1.2 5-羟色胺系统 | 第20页 |
| 1.3 催产素和催乳素 | 第20-21页 |
| 1.4 β-内啡肽 | 第21-22页 |
| 1.5 乙酰胆碱 | 第22页 |
| 1.6 氨基酸 | 第22-23页 |
| 1.7 一氧化氮 | 第23-24页 |
| 2 射精的脑部神经调节机制 | 第24-28页 |
| 2.1 性欲的唤起 | 第24-25页 |
| 2.2 射精的脑部区域调控系统 | 第25-28页 |
| 2.2.1 内侧视前区和下丘脑室旁核 | 第26页 |
| 2.2.2 杏仁体和海马 | 第26-27页 |
| 2.2.3 伏隔核 | 第27页 |
| 2.2.4 扣带回皮质 | 第27页 |
| 2.2.5 前脑内侧束 | 第27-28页 |
| 2.2.6 间脑 | 第28页 |
| 3 基因调节射精的研究进展 | 第28页 |
| 4 展望 | 第28-29页 |
| 参考文献 | 第29-41页 |
| 第二章 雄性大鼠交配模型实验 | 第41-47页 |
| 一 引言 | 第41页 |
| 二 材料与方法 | 第41-42页 |
| 1 实验材料 | 第41页 |
| 1.1 实验动物 | 第41页 |
| 1.2 主要药品及设备器械 | 第41页 |
| 2 实验方法 | 第41-42页 |
| 2.1 雌鼠去势手术 | 第41-42页 |
| 2.2 激素诱导雌鼠发情 | 第42页 |
| 2.3 交配实验 | 第42页 |
| 三 结果 | 第42-44页 |
| 1 雌鼠去势及发情处理 | 第42页 |
| 2 大鼠性行为特征的描述 | 第42-44页 |
| 四 讨论 | 第44-45页 |
| 五 结论 | 第45页 |
| 参考文献 | 第45-47页 |
| 第三章 8-OH-DPAT和达泊西汀对雄性大鼠射精的影响 | 第47-52页 |
| 一 引言 | 第47页 |
| 二 材料与方法 | 第47-48页 |
| 1 实验材料 | 第47-48页 |
| 1.1 实验动物 | 第47页 |
| 1.2 主要药品与器械 | 第47-48页 |
| 2 实验方法 | 第48页 |
| 2.1 建立雌鼠发情模型 | 第48页 |
| 2.2 性行为观察 | 第48页 |
| 3 统计学分析 | 第48页 |
| 三 结果与分析 | 第48-49页 |
| 1 8-OH-DPAT对雄鼠性行为的影响 | 第48-49页 |
| 2 达泊西汀对雄鼠性行为的影响 | 第49页 |
| 四 讨论 | 第49-50页 |
| 五 结论 | 第50页 |
| 参考文献 | 第50-52页 |
| 第四章 目的基因测序筛选与调节机制分析 | 第52-115页 |
| 一 引言 | 第52-53页 |
| 二 材料与方法 | 第53-60页 |
| 1 实验材料 | 第53页 |
| 1.1 实验动物 | 第53页 |
| 1.2 主要药品、试剂及器械 | 第53页 |
| 1.2.1 主要药品和试剂 | 第53页 |
| 1.2.2 主要仪器和器械 | 第53页 |
| 2 实验方法 | 第53-60页 |
| 2.1 建立雌鼠发情模型 | 第53页 |
| 2.2 性行为观察及脑组织取样 | 第53-54页 |
| 2.3 脑组织总RNA的提取(Trizol法) | 第54页 |
| 2.4 总RNA纯度和完整性检测 | 第54-55页 |
| 2.5 转录组测序 | 第55-56页 |
| 2.5.1 转录组测序的实验步骤 | 第55页 |
| 2.5.2 转录组信息分析流程 | 第55-56页 |
| 2.6 qRT-PCR验证实验 | 第56-60页 |
| 2.6.1 样品取样及总RNA抽提 | 第56-57页 |
| 2.6.2 总RNA纯度和完整性检测 | 第57页 |
| 2.6.3 逆转录 | 第57页 |
| 2.6.4 定量PCR | 第57-60页 |
| 三 结果与分析 | 第60-99页 |
| 1 总RNA纯度及完整性 | 第60-64页 |
| 2 转录组测序结果概述 | 第64-81页 |
| 2.1 原始序列数据测量评估分析 | 第64-67页 |
| 2.2 Clean reads产量结果 | 第67-68页 |
| 2.3 Reads与参考序列比对分析 | 第68-69页 |
| 2.4 Reads在参考基因上的分布 | 第69-71页 |
| 2.5 基因覆盖度统计 | 第71-73页 |
| 2.6 基因差异表达分析 | 第73-81页 |
| 2.6.1 生物学重复样品间的差异比对分析 | 第73-75页 |
| 2.6.2 差异基因统计及表达图示 | 第75-78页 |
| 2.6.3 差异基因的GO功能显著性富集分析 | 第78-80页 |
| 2.6.4 Pathway显著性富集分析 | 第80-81页 |
| 3 射精相关基因差异表达分析 | 第81-91页 |
| 3.1 多巴胺相关基因 | 第81-83页 |
| 3.2 5-羟色胺相关基因 | 第83-84页 |
| 3.3 胆碱能受体基因 | 第84-86页 |
| 3.4 神经肽类激素基因 | 第86-87页 |
| 3.5 阿黑皮素原基因 | 第87-89页 |
| 3.6 谷氨酸和γ-氨基丁酸受体基因 | 第89-90页 |
| 3.7 离子电压门控通道相关基因 | 第90-91页 |
| 4 射精相关基因的qRT-PCR验证 | 第91-99页 |
| 4.1 总RNA的完整性检测 | 第92页 |
| 4.2 射精相关基因定量检测 | 第92-99页 |
| 4.2.1 多巴胺相关基因 | 第92-93页 |
| 4.2.3 5-羟色胺相关基因 | 第93-95页 |
| 4.2.4 胆碱能受体基因 | 第95页 |
| 4.2.5 神经肽类激素基因 | 第95-96页 |
| 4.2.6 阿黑皮素原基因 | 第96-97页 |
| 4.2.7 谷氨酸和GABA受体基因 | 第97-98页 |
| 4.2.8 离子电压门控通道相关基因 | 第98-99页 |
| 四 讨论 | 第99-110页 |
| 1 高通量技术在基因挖掘中的作用 | 第99-100页 |
| 2 qRT-PCR技术的验证 | 第100页 |
| 3 射精相关基因的挖掘 | 第100-105页 |
| 3.1 多巴胺D4受体基因 | 第100-101页 |
| 3.2 5-羟色胺合成酶基因 | 第101页 |
| 3.3 乙酰胆碱受体基因 | 第101-102页 |
| 3.4 催产素基因Oxt | 第102-103页 |
| 3.5 催乳素基因Prl | 第103页 |
| 3.6 血管加压素基因Avp | 第103页 |
| 3.7 阿黑皮素原基因Pomc | 第103-104页 |
| 3.8 γ-氨基丁酸受体基因 | 第104页 |
| 3.9 钙离子电压门控通道基因 | 第104-105页 |
| 4 8-OH-DPAT促进射精的分子机制设想 | 第105-107页 |
| 5 达泊西汀延缓射精的分子机制设想 | 第107页 |
| 6 基因反馈调节射精的假说 | 第107-110页 |
| 五 结论 | 第110-111页 |
| 参考文献 | 第111-115页 |
| 第五章 大鼠射精相关基因与人及其他哺乳动物的同源性分析 | 第115-129页 |
| 一 引言 | 第115页 |
| 二 实验材料和方法 | 第115-116页 |
| 1 材料 | 第115-116页 |
| 2 方法 | 第116页 |
| 三 结果与分析 | 第116-127页 |
| 1 Drd4基因编码蛋白同源性分析 | 第116-117页 |
| 2 Tph1基因编码蛋白同源性分析 | 第117-118页 |
| 3 Chrna3基因编码蛋白同源性分析 | 第118页 |
| 4 Chrnb4基因编码蛋白同源性分析 | 第118-119页 |
| 5 Oxt基因编码蛋白同源性分析 | 第119-120页 |
| 6 Prl基因编码蛋白同源性分析 | 第120-121页 |
| 7 Avp基因编码蛋白同源性分析 | 第121-122页 |
| 8 Pomc基因编码蛋白同源性分析 | 第122-123页 |
| 9 Gabra6基因编码蛋白同源性分析 | 第123-124页 |
| 10 Gabrr1基因编码蛋白同源性分析 | 第124-125页 |
| 11 Cacna1f基因编码蛋白同源性分析 | 第125-126页 |
| 12 11个射精相关基因平均同源性分析 | 第126-127页 |
| 四 讨论 | 第127-128页 |
| 五 结论 | 第128页 |
| 参考文献 | 第128-129页 |
| 附录 | 第129-170页 |
| 致谢 | 第170页 |