| 中文摘要 | 第9-11页 |
| ABSTRACT | 第11-12页 |
| 1 综述 | 第13-20页 |
| 1.1 我国药用植物研究概况 | 第13-15页 |
| 1.1.1 药用植物资源现状 | 第13页 |
| 1.1.2 分子标记技术在药用植物中的应用 | 第13-14页 |
| 1.1.3 组织培养技术在药用植物中的应用 | 第14-15页 |
| 1.1.4 药用植物资源的可持续发展 | 第15页 |
| 1.2 黄芩研究概况 | 第15-19页 |
| 1.2.1 黄芩属植物分类及分布 | 第15-16页 |
| 1.2.2 黄芩形态特征 | 第16-17页 |
| 1.2.3 黄芩种质资源研究 | 第17页 |
| 1.2.4 黄芩药理药化研究 | 第17页 |
| 1.2.5 黄芩分子标记技术研究 | 第17-18页 |
| 1.2.6 黄芩组织培养研究 | 第18-19页 |
| 1.2.7 黄芩人工栽培技术研究 | 第19页 |
| 1.3 本项研究的目的与意义 | 第19-20页 |
| 2 山西野生黄芩种质资源的RAPD分析 | 第20-33页 |
| 2.1 材料与方法 | 第20-23页 |
| 2.1.1 材料 | 第20-21页 |
| 2.1.2 仪器 | 第21-22页 |
| 2.1.3 试剂 | 第22页 |
| 2.1.4 方法 | 第22-23页 |
| 2.2 结果与分析 | 第23-31页 |
| 2.2.1 PCR扩增结果分析 | 第23-25页 |
| 2.2.2 聚类分析 | 第25-31页 |
| 2.3 结论 | 第31-33页 |
| 2.3.1 山西野生黄芩种质具有丰富的遗传多样性 | 第31页 |
| 2.3.2 山西野生黄芩的地理分布与遗传多样性没有直接关系 | 第31-32页 |
| 2.3.3 黄芩茎愈伤组织是进行RAPD分析的理想材料 | 第32-33页 |
| 3 山西野生黄芩快速繁殖体系的建立与优化 | 第33-43页 |
| 3.1 山西野生黄芩快速繁殖体系的建立 | 第33-40页 |
| 3.1.1 材料与方法 | 第33-34页 |
| 3.1.2 结果与分析 | 第34-40页 |
| 3.1.3 结论 | 第40页 |
| 3.2 山西野生黄芩快速繁殖体系的优化 | 第40-43页 |
| 3.2.1 材料与方法 | 第40-41页 |
| 3.2.2 结果与分析 | 第41-42页 |
| 3.2.3 结论 | 第42-43页 |
| 4 山西野生黄芩试管植株的形态观察与比较 | 第43-49页 |
| 4.1 材料与方法 | 第43-44页 |
| 4.1.1 材料 | 第43页 |
| 4.1.2 方法 | 第43-44页 |
| 4.1.3 数据统计与处理 | 第44页 |
| 4.2 结果与分析 | 第44-48页 |
| 4.2.1 株高的比较 | 第44页 |
| 4.2.2 主茎直径的比较 | 第44-45页 |
| 4.2.3 最大叶长的比较 | 第45-46页 |
| 4.2.4 最大叶宽的比较 | 第46页 |
| 4.2.5 平均根长的比较 | 第46-47页 |
| 4.2.6 平均根粗的比较 | 第47-48页 |
| 4.3 结论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-55页 |
| 图版说明 | 第55-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 个人简历 | 第65-67页 |