| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-13页 |
| 第一章 综述 | 第13-24页 |
| ·炎症与疾病 | 第13-19页 |
| ·炎症 | 第13页 |
| ·炎症介质和细胞因子 | 第13-16页 |
| ·一氧化氮（NO）和诱导型一氧化氮合酶（iNOS） | 第14页 |
| ·前列腺素E2（PGE2）与环氧合酶 (COX) | 第14-15页 |
| ·活性氧簇（ROS） | 第15页 |
| ·细胞因子 | 第15-16页 |
| ·炎症信号通路 | 第16-18页 |
| ·Toll样受体 | 第16页 |
| ·信号通路 | 第16-18页 |
| ·神经炎症与阿尔茨海默病（AD） | 第18-19页 |
| ·天然产物抗炎活性研究的重要性 | 第19-21页 |
| ·褐藻胶 | 第21-22页 |
| ·本文研究意义和创新点 | 第22-24页 |
| ·研究意义 | 第22-23页 |
| ·创新点 | 第23-24页 |
| 第二章 氧化降解褐藻胶寡糖(AdO)的制备和结构表征 | 第24-30页 |
| ·实验试剂和仪器 | 第24-25页 |
| ·实验试剂 | 第24页 |
| ·实验仪器 | 第24-25页 |
| ·实验方法 | 第25-26页 |
| ·PG和PM的制备 | 第25页 |
| ·利用红外光谱法分析PG和PM的结构 | 第25页 |
| ·氧化降解褐藻胶寡糖（AdO）的制备 | 第25-26页 |
| ·圆二色谱（CD）法检测褐藻胶寡糖的圆二色性 | 第26页 |
| ·薄层层析（TLC）法检测褐藻胶寡糖的聚合度 | 第26页 |
| ·实验结果 | 第26-29页 |
| ·PG和PM的结构分析 | 第26-27页 |
| ·圆二色性分析 | 第27-28页 |
| ·聚合度检测 | 第28-29页 |
| ·讨论 | 第29-30页 |
| 第三章AdO对LPS诱导的RAW264.7 细胞炎症模型的抗炎活性研究 | 第30-48页 |
| ·实验试剂和仪器 | 第30-32页 |
| ·实验试剂 | 第30-31页 |
| ·实验仪器 | 第31-32页 |
| ·实验方法 | 第32-35页 |
| ·细胞培养 | 第32页 |
| ·细胞活力（CCK-8）测定 | 第32页 |
| ·一氧化氮（NO）和前列腺素E2（PGE2）生成量的测定 | 第32-33页 |
| ·活性氧簇（ROS）的测定 | 第33页 |
| ·酶联免疫法（ELISA）检测细胞因子的分泌量 | 第33页 |
| ·反转录聚合酶链式反应（RT-PCR） | 第33-34页 |
| ·蛋白免疫印迹（Western blot） | 第34页 |
| ·免疫荧光技术检测Toll样受体 4（TLR4）以及NF-κB的表达情况 | 第34-35页 |
| ·暗场显微镜观察RAW264.7 细胞形态学变化 | 第35页 |
| ·数据处理及统计学分析 | 第35页 |
| ·实验结果 | 第35-45页 |
| ·褐藻胶对LPS诱导的RAW264.7 细胞产生NO和PGE2的影响以及细胞活力的检测 | 第35-37页 |
| ·AdO对LPS诱导的RAW264.7 细胞生成ROS的测定 .. 25 | 第37-38页 |
| ·AdO对LPS诱导的RAW264.7 细胞表达TNF-α、IL-1β、IL-6 的影响 | 第38-40页 |
| ·AdO对LPS诱导的RAW264.7 细胞表达iNOS和COX-2的影响 | 第40-41页 |
| ·AdO对LPS诱导的RAW264.7 细胞表达TLR4 和CD14的影响 | 第41-42页 |
| ·AdO对LPS激活的NF-κB信号通路的影响 | 第42-44页 |
| ·AdO对LPS激活的MAPK信号通路的影响 | 第44页 |
| ·AdO对LPS诱导的RAW264.7 细胞形态学变化的影响 32 | 第44-45页 |
| ·讨论 | 第45-48页 |
| 第四章 AdO对LPS和 β-淀粉样蛋白（Aβ）诱导的小神经胶质细胞BV2炎症模型的抗炎活性研究 | 第48-62页 |
| ·实验试剂和仪器 | 第48-50页 |
| ·实验试剂 | 第48-49页 |
| ·实验仪器 | 第49-50页 |
| ·实验方法 | 第50-52页 |
| ·细胞培养 | 第50页 |
| ·细胞活力（CCK-8）测定 | 第50页 |
| ·一氧化氮（NO）和前列腺素E2（PGE2）生产量的测定 | 第50页 |
| ·酶联免疫法（ELISA）检测细胞因子的分泌量 | 第50-51页 |
| ·反转录聚合酶链式反应（RT-PCR） | 第51页 |
| ·蛋白免疫印迹 | 第51页 |
| ·免疫荧光技术检测Toll样受体 4（TLR4）以及NF-κB的表达 | 第51页 |
| ·数据处理及统计学分析 | 第51-52页 |
| ·实验结果 | 第52-60页 |
| ·褐藻胶对LPS诱导的BV2细胞产生NO和PGE2的影响以及细胞活力的检测 | 第52-53页 |
| ·AdO对LPS诱导的BV2细胞表达TNF-α、IL-1β、IL-6的影响 | 第53-55页 |
| ·AdO对LPS诱导的BV2细胞表达iNOS和COX-2 的影响 | 第55-56页 |
| ·AdO对LPS诱导的BV2 细胞表达TLR4 的影响 | 第56-57页 |
| ·AdO对LPS激活的NF-κB信号通路的影响 | 第57-58页 |
| ·AdO对Aβ 诱导的BV2 细胞产生TNF-α、IL-12、IL-6 的影响 | 第58-60页 |
| ·讨论 | 第60-62页 |
| 第五章 总结 | 第62-64页 |
| ·本论文总结 | 第62页 |
| ·展望 | 第62-64页 |
| 参考文献 | 第64-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 攻读硕士学位的研究成果 | 第70-71页 |
