| 中文摘要 | 第1-5页 |
| 英文摘要 | 第5-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-58页 |
| 第一节 植物雄性不育的分子机理研究进展 | 第12-21页 |
| 1． 叶绿体DNA（cpDNA）与CMS | 第12-13页 |
| 2． 线粒体DNA（mtDNA）与CMS | 第13-15页 |
| 3． 质粒DNA（pdDNA）与CMS | 第15-16页 |
| 4． 核基因组对CMS的影响 | 第16-17页 |
| 参考文献 | 第17-21页 |
| 第二节 小麦雄性不育性的研究进展 | 第21-36页 |
| 1． 小麦细胞质雄性不育 | 第22-24页 |
| 1．1 普通小麦细胞质雄性不育性 | 第22页 |
| 1．2 异源细胞质雄性不育性 | 第22-24页 |
| 2． 小麦核型雄性不育 | 第24-27页 |
| 2．1 小麦核型雄性不育的育性机理 | 第25页 |
| 2．2 小麦核不育的细胞学研究 | 第25页 |
| 2．3 小麦核型雄性不育系研究利用的主要类型 | 第25-27页 |
| 3． 小麦光温敏雄性不育性的研究和利用 | 第27-31页 |
| 3．1 小麦核质互作型光（温）敏雄性不育性 | 第27-29页 |
| 3．2 核型光（温）敏雄性不育的研究 | 第29-31页 |
| 3．3 普通小麦光（温）敏雄性不育性的研究 | 第31页 |
| 参考文献 | 第31-36页 |
| 第三节 杂交小麦研究利用状况 | 第36-43页 |
| 1． 杂交小麦的研究历史概况 | 第36-37页 |
| 2． 杂交小麦的研究现状 | 第37-39页 |
| 2．1 T型、K型雄性不育体系的研究 | 第37-38页 |
| 2．2 新型胞质不育体系的研究 | 第38页 |
| 2．3 化学杂交剂利用体系研究 | 第38-39页 |
| 2．4 光温敏雄性不育体系利用研究 | 第39页 |
| 3． 杂交小麦研究存在的问题和前景展望 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-43页 |
| 第四节 分子标记在植物遗传育种中的应用 | 第43-56页 |
| 1． 遗传标记的类型 | 第43-45页 |
| 1．1 形态标记 | 第44页 |
| 1．2 细胞标记 | 第44页 |
| 1．3 生化标记—同工酶标记 | 第44-45页 |
| 1．4 分子标记 | 第45页 |
| 2． 分子标记的检测技术 | 第45-49页 |
| 2．1 以电泳技术和分子杂交技术为核心的分子标记技术 | 第45-47页 |
| 2．2 以电泳技术和PCR技术为核心的分子标记 | 第47-49页 |
| 2．3 以DNA序列为核心的分子标记 | 第49页 |
| 3． 分子标记在作物遗传育种中的应用 | 第49-54页 |
| 3．1 遗传图谱构建 | 第50-51页 |
| 3．2 标记和定位目的的基因 | 第51-52页 |
| 3．3 亲缘关系分析及鉴定与标记外源染色体片段 | 第52-53页 |
| 3．4 鉴定品种和绘制指纹图谱 | 第53页 |
| 3．5 分子标记辅助选择 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-56页 |
| 第五节 本研究的目的、意义和主要内容 | 第56-58页 |
| 1． 本研究的目的、意义 | 第56-57页 |
| 2． 主要实验内容 | 第57页 |
| 3． 预期结果及新见解 | 第57-58页 |
| 第二章 光周期敏感小麦雄性不育系A31在不同生态地区的育性表现 | 第58-65页 |
| 摘要 | 第58页 |
| 1． 材料与方法 | 第58-59页 |
| 1．1 试验材料 | 第58页 |
| 1．2 试验方法 | 第58-59页 |
| 2． 结果与分析 | 第59-62页 |
| 2．1 七个试验点的生态条件 | 第59-61页 |
| 2．2 A31在不同生态点的育性变异 | 第61-62页 |
| 3． 讨论 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-65页 |
| 第三章 A31雄性育性对光周期的反应研究 | 第65-72页 |
| 摘要 | 第65页 |
| 1． 材料与方法 | 第65-66页 |
| 1．1 试验材料 | 第65页 |
| 1．2 试验方法 | 第65-66页 |
| 2． 结果与分析 | 第66-69页 |
| 2．1 A31雄性育性对光周期的反应 | 第66-68页 |
| 2．2 A31雄性育性对光周期反应的敏感阶段试验 | 第68-69页 |
| 3． 讨论 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-72页 |
| 第四章 光周期敏感小麦雄性不育系A31花粉发育过程中酶活性变化研究 | 第72-77页 |
| 摘要 | 第72页 |
| 1． 材料与方法 | 第72-73页 |
| 1．1 试验材料 | 第72页 |
| 1．2 取样试验方法 | 第72-73页 |
| 1．3 酶活测定方法 | 第73页 |
| 2． 结果与分析 | 第73-75页 |
| 2．1 A31花药发育的不同时期倒二叶SOD、CAT活性比较 | 第73-74页 |
| 2．2 A31不同时期花药SOD、CAT活性比较 | 第74-75页 |
| 3． 讨论 | 第75页 |
| 参考文献 | 第75-77页 |
| 第五章 小麦RAPD扩增体系优化研究 | 第77-84页 |
| 摘要 | 第77页 |
| 1． 材料与方法 | 第77-78页 |
| 1．1 材料 | 第77页 |
| 1．2 小麦DNA的提取 | 第77页 |
| 1．3 各影响因素不同浓度的比较 | 第77页 |
| 1．4 反应条件比较 | 第77-78页 |
| 2． 结果与分析 | 第78-82页 |
| 2．1 DNA模板浓度对RAPD扩增的影响 | 第78页 |
| 2．2 Mg~（2+）浓度对RAPD扩增的影响 | 第78-79页 |
| 2．3 dNTPs浓度对RAPD扩增的影响 | 第79页 |
| 2．4 引物浓度对RAPD扩增的影响 | 第79-80页 |
| 2．5 Taq DNA聚合酶的量对RAPD扩增的影响 | 第80-81页 |
| 2．6 循环次数对RAPD扩增的影响 | 第81页 |
| 2．7 小麦RAPD分析的优化反应体系 | 第81-82页 |
| 3． 讨论 | 第82页 |
| 参考文献 | 第82-84页 |
| 第六章 小麦光敏雄性不育基因的RAPD标记 | 第84-95页 |
| 摘要 | 第84-85页 |
| 1． 材料与方法 | 第85-87页 |
| 1．1 试验材料 | 第85页 |
| 1．2 试验方法 | 第85-87页 |
| 2． 结果与分析 | 第87-92页 |
| 2．1 A31及F_2分离群体的育性表现 | 第87-88页 |
| 2．2 RAPD分析 | 第88-92页 |
| 3． 讨论 | 第92-93页 |
| 参考文献 | 第93-95页 |
| 第七章 结论与讨论 | 第95-98页 |
| 1． A31在不同光温生态地点的育性变异 | 第95页 |
| 2． A31雄性育性对光周期的反应及光周期反应的敏感阶段 | 第95-96页 |
| 3． 关于A31的心皮化问题 | 第96页 |
| 4． A31花粉发育过程中酶活性变化及与花粉败育的关系 | 第96页 |
| 5． A31光敏雄性不育性的遗传 | 第96-97页 |
| 6． A31光敏雄性不育基因的RAPD标记 | 第97-98页 |
| 致谢 | 第98-99页 |
| 作者简介 | 第99页 |
