| 摘要 | 第1-11页 |
| ABSTRACT | 第11-13页 |
| 第一部分 文献综述 | 第13-39页 |
| 第一章 杂种一代犏牛雄性不育机理的研究 | 第13-21页 |
| 1 牦牛起源的研究 | 第13-14页 |
| 2 犏牛雄性不育的研究 | 第14-17页 |
| ·犏牛精子发生水平的探究 | 第14-15页 |
| ·牦牛、犏牛生殖器官的比较 | 第15页 |
| ·细胞内分泌学的研究 | 第15页 |
| ·细胞遗传学的研究 | 第15-16页 |
| ·生化遗传学的研究 | 第16页 |
| ·促进育性恢复的尝试 | 第16-17页 |
| 参考文献 | 第17-21页 |
| 第二章 同源重组在精子发生中的作用 | 第21-39页 |
| 1 精子发生过程 | 第21-22页 |
| 2 精子发生的基因调控 | 第22-27页 |
| ·生精细胞周期蛋白基因 | 第22-23页 |
| ·cAMP反应元件调节子 | 第23页 |
| ·干细胞因子基因 | 第23-24页 |
| ·热休克蛋白家族 | 第24-25页 |
| ·DAZ家族 | 第25-26页 |
| ·原癌基因 | 第26-27页 |
| ·其他相关基因 | 第27页 |
| 3 同源重组在减数分裂中的作用 | 第27-32页 |
| ·精母细胞减数分裂 | 第27-28页 |
| ·同源重组及相关基因的研究 | 第28-32页 |
| 4 问题与展望 | 第32页 |
| 参考文献 | 第32-39页 |
| 第二部分 试验研究 | 第39-79页 |
| 第三章 黄牛、牦牛和犏牛Dmc1基因的克隆、序列分析及睾丸组织mRNA表达水平研究 | 第39-57页 |
| 1 材料与方法 | 第39-45页 |
| ·试验动物 | 第39页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第39-40页 |
| ·组织总RNA提取 | 第40-41页 |
| ·反转录 | 第41页 |
| ·引物设计与合成 | 第41-42页 |
| ·PCR反应和产物回收及克隆测序 | 第42-43页 |
| ·氨基酸序列的生物信息学分析 | 第43页 |
| ·系统发育树的构建 | 第43页 |
| ·荧光实时定量PCR | 第43-45页 |
| 2 结果与分析 | 第45-54页 |
| ·牦牛和犏牛睾丸组织Dmc1基因和β-actin基因的RT-PCR扩增结果 | 第45页 |
| ·黄牛、牦牛和犏牛Dmc1基因编码区序列分析 | 第45-46页 |
| ·黄牛、牦牛和犏牛Dmc1蛋白的氨基酸序列分析与结构预测 | 第46-51页 |
| ·黄牛、牦牛和犏牛Dmc1蛋白三级结构预测 | 第51-52页 |
| ·系统发育分析 | 第52-53页 |
| ·黄牛、牦牛和犏牛睾丸组织Dmc1基因mRNA表达水平分析 | 第53-54页 |
| 3 讨论 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-57页 |
| 第四章 黄牛、牦牛和犏牛睾丸组织中Rad51基因mRNA表达水平研究 | 第57-65页 |
| 1 材料与方法 | 第57-59页 |
| ·试验动物 | 第57-58页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第58页 |
| ·组织总RNA提取 | 第58页 |
| ·反转录 | 第58页 |
| ·引物设计与合成 | 第58页 |
| ·PCR反应和产物回收及克隆测序 | 第58页 |
| ·荧光实时定量PCR | 第58-59页 |
| 2 结果与分析 | 第59-61页 |
| ·黄牛、牦牛和犏牛Rad51基因和β-actin基因RT-PCR扩增结果 | 第59页 |
| ·黄牛、牦牛和犏牛睾丸组织Rad51基因mRNA表达水平分析 | 第59-61页 |
| 3 讨论 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-65页 |
| 第五章 黄牛、牦牛和犏牛睾丸组织中RPA1基因mRNA表达水平研究 | 第65-73页 |
| 1 材料与方法 | 第65-66页 |
| ·试验动物 | 第65页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第65页 |
| ·组织总RNA提取 | 第65-66页 |
| ·反转录 | 第66页 |
| ·引物设计与合成 | 第66页 |
| ·PCR反应和产物回收及克隆测序 | 第66页 |
| ·荧光实时定量PCR | 第66页 |
| 2 结果与分析 | 第66-69页 |
| ·黄牛、牦牛和犏牛RPA1基因和β-actin基因RT-PCR扩增结果 | 第66-67页 |
| ·黄牛、牦牛和犏牛睾丸组织RPAl基因mRNA表达水平分析 | 第67-69页 |
| 3 讨论 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-73页 |
| 第六章 黄牛、牦牛和犏牛睾丸组织中BLM基因mRNA表达水平研究 | 第73-79页 |
| 1 材料与方法 | 第73-74页 |
| ·试验动物 | 第73页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第73页 |
| ·组织总RNA提取 | 第73页 |
| ·反转录 | 第73-74页 |
| ·引物设计与合成 | 第74页 |
| ·PCR反应和产物回收及克隆测序 | 第74页 |
| ·实时荧光定量PCR | 第74页 |
| 2 结果与分析 | 第74-76页 |
| ·黄牛、牦牛和犏牛BLM基因和β-actin基因RT-PCR扩增结果 | 第74-75页 |
| ·黄牛、牦牛和犏牛睾丸组织BLM基因mRNA表达水平分析 | 第75-76页 |
| 3 讨论 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-79页 |
| 全文结论 | 第79-81页 |
| 创新点 | 第81-83页 |
| 附录 | 第83-85页 |
| 1 RNA提取所需DEPC水的配制 | 第83页 |
| 2 琼脂糖电泳试剂配制 | 第83-85页 |
| 致谢 | 第85页 |
