| 中文摘要 | 第1-10页 |
| 英文摘要 | 第10-12页 |
| 1． 文献综述 | 第12-22页 |
| 1．1 TGF-β超家族及其信号转导 | 第12-16页 |
| 1．1．1 TGF-β超家族的结构特征 | 第12-13页 |
| 1．1．2 TGF-β受体及信号传递 | 第13-14页 |
| 1．1．3 TGF-β作用方式及调控 | 第14页 |
| 1．1．4 TGF-β生物学效应 | 第14-15页 |
| 1．1．5 TGF-β超家族成员的细胞内信号转导 | 第15-16页 |
| 1．2 骨形态发生蛋白11基因(BMP11)的研究现状 | 第16-20页 |
| 1．2．1 BMP11的发现、结构、同源性分析及染色体定位 | 第16-17页 |
| 1．2．2 BMP11的功能研究 | 第17-18页 |
| 1．2．3 BMP11的负调控作用 | 第18-19页 |
| 1．2．4 BMP11在胚体内的表达情况 | 第19-20页 |
| 1．2．5 BMP11的信号传导通路 | 第20页 |
| 1．3 猪基因图谱研究进展 | 第20-22页 |
| 2． 本研究的目的意义 | 第22-23页 |
| 3． 材料与方法 | 第23-33页 |
| 3．1 材料 | 第23-25页 |
| 3．1．1 菌株 | 第23页 |
| 3．1．2 实验材料 | 第23页 |
| 3．1．3 主要试剂及来源 | 第23-24页 |
| 3．1．4 主要仪器设备 | 第24页 |
| 3．1．5 辐射杂种板 | 第24页 |
| 3．1．6 主要分子生物学数据库及软件 | 第24-25页 |
| 3．2 方法 | 第25-33页 |
| 3．2．1 培养基、缓冲液与常用试剂的配制 | 第25-26页 |
| 3．2．2 总RNA的提取 | 第26-27页 |
| 3．2．3 基因组 DNA的提取 | 第27-28页 |
| 3．2．4 引物设计 | 第28页 |
| 3．2．5 猪BMP11序列的克隆 | 第28-29页 |
| 3．2．6 5'-RACE技术 | 第29-30页 |
| 3．2．7 扩增产物的纯化、克隆、鉴定和测序 | 第30-31页 |
| 3．2．8 DNA序列同源性检索鉴定 | 第31页 |
| 3．2．9 猪BMP11的组织表达谱研究 | 第31-32页 |
| 3．2．10 基因物理定位的RH方法 | 第32-33页 |
| 4． 结果与分析 | 第33-44页 |
| 4．1 总RNA的提取与检测 | 第33页 |
| 4．2 猪BMP11的克隆及分析 | 第33-40页 |
| 4．2．1 外显子2的克隆及同源性比较 | 第33-35页 |
| 4．2．2 BMP11的5’端克隆及同源性比较 | 第35-37页 |
| 4．2．3 内含子2的克隆 | 第37页 |
| 4．2．4 猪BMP11同人、小鼠和大鼠的同源性比较 | 第37-40页 |
| 4．3 猪BMP11的组织表达谱分析 | 第40-42页 |
| 4．4 猪BMP11的染色体精细定位 | 第42-44页 |
| 5． 讨论 | 第44-48页 |
| 5．1 总RNA提取及5’-RACE | 第44页 |
| 5．2 BMP11的鉴定和序列分析 | 第44-45页 |
| 5．3 BMP11的组织表达分析 | 第45-46页 |
| 5．4 BMP11的物理定位 | 第46-48页 |
| 5．4．1 定位引物的设计 | 第46页 |
| 5．4．2 BMP11的物理定位 | 第46-48页 |
| 6． 小结 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-54页 |
| 致谢 | 第54-56页 |
| 在读期间发表论文题录 | 第56-57页 |
| 附录 | 第57-67页 |
