| 致谢 | 第1-5页 |
| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6-9页 |
| 第1章 前言 | 第9-16页 |
| ·IL-6家族细胞因子及其受体复合物 | 第9-11页 |
| ·IL-6受体的两种存在方式:膜结合型和可溶性受体 | 第11-13页 |
| ·H-IL-6(HYPER-IL-6) | 第13页 |
| ·研究内容 | 第13-16页 |
| 第2章 大鼠海马神经元的体外培养和鉴定 | 第16-28页 |
| ·试剂与器材 | 第16-18页 |
| ·试剂 | 第16-17页 |
| ·材料 | 第17页 |
| ·溶液 | 第17-18页 |
| ·材料与方法 | 第18-20页 |
| ·实验动物 | 第18页 |
| ·培养液 | 第18页 |
| ·抗体 | 第18页 |
| ·用L-多聚赖氨酸(poly-L-lysine)铺培养板 | 第18页 |
| ·新生大鼠海马组织的分离 | 第18-19页 |
| ·神经元的分离和原代培养 | 第19-20页 |
| ·神经元的免疫细胞化学鉴定 | 第20页 |
| ·结果 | 第20-23页 |
| ·原代培养神经元形态观察 | 第20-22页 |
| ·神经元与神经胶质细胞的免疫鉴定 | 第22-23页 |
| ·讨论 | 第23-28页 |
| ·大鼠原代海马神经元的培养 | 第23-25页 |
| ·神经元与神经胶质细胞的免疫鉴定 | 第25-28页 |
| 第3章 WESTERN BLOTTING实验体系的建立 | 第28-44页 |
| ·试剂与材料 | 第29-32页 |
| ·实验动物 | 第29页 |
| ·抗体 | 第29页 |
| ·试剂与器材 | 第29-30页 |
| ·溶液 | 第30-32页 |
| ·实验方法 | 第32-38页 |
| ·神经细胞的裂解或用TRIzol试剂对蛋白的直接抽提 | 第32-34页 |
| ·SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第34-36页 |
| ·用考马斯亮蓝对SDS聚丙烯酰胺凝胶进行染色 | 第36页 |
| ·蛋白质从SDS聚丙烯酰胺凝胶电转至固体支持相 | 第36-38页 |
| ·用第二抗体偶联物进行免疫检测 | 第38页 |
| ·结果 | 第38-40页 |
| ·讨论 | 第40-44页 |
| 第4章 海马神经细胞IL-6受体的定位 | 第44-54页 |
| ·试剂与器材 | 第44-45页 |
| ·试剂 | 第44页 |
| ·器材 | 第44-45页 |
| ·溶液 | 第45页 |
| ·材料与方法 | 第45-48页 |
| ·实验动物 | 第45页 |
| ·培养液 | 第45页 |
| ·抗体 | 第45-46页 |
| ·用L-多聚赖氨酸(poly-L-lysine)铺培养板 | 第46页 |
| ·新生大鼠海马的分离 | 第46页 |
| ·神经元的分离和原代培养 | 第46页 |
| ·实验设计 | 第46-47页 |
| ·免疫荧光检测IL-6受体的存在方式 | 第47-48页 |
| ·共聚焦显微系统 | 第48页 |
| ·结果 | 第48-51页 |
| ·讨论 | 第51-54页 |
| 第5章 IL-6受体的存在方式对神经细胞信号转导的影响 | 第54-68页 |
| ·试剂与器材 | 第54-56页 |
| ·试剂与器材 | 第54-55页 |
| ·溶液 | 第55-56页 |
| ·材料与方法 | 第56-61页 |
| ·实验动物 | 第56页 |
| ·抗体 | 第56页 |
| ·实验设计 | 第56-57页 |
| ·神经细胞裂解 | 第57-58页 |
| ·SDS-PAGE | 第58-60页 |
| ·蛋白质电转 | 第60页 |
| ·免疫发光检测 | 第60-61页 |
| ·结果 | 第61-63页 |
| ·讨论 | 第63-68页 |
| ·sIL-6在神经元中介导IL-6的信号转导 | 第63-65页 |
| ·JAK-STAT3通路 | 第65-66页 |
| ·STAT3的非持续性激活 | 第66-68页 |
| 总结与展望 | 第68-71页 |
| 参考文献 | 第71-77页 |
| 综述 | 第77-89页 |
| 作者简历 | 第89页 |
