| 中文摘要 | 第1-11页 |
| ABSTRACT | 第11-14页 |
| 引言 | 第14-16页 |
| 上篇 文献综述 | 第16-57页 |
| 真菌的程序性细胞死亡 | 第17-57页 |
| 摘要 | 第17页 |
| ABSTRACT | 第17-18页 |
| 1 模式生物中程序性细胞死亡 | 第18-19页 |
| 2 真菌细胞死亡反应 | 第19-23页 |
| ·自体吞噬 | 第19-20页 |
| ·菌丝自溶 | 第20页 |
| ·衰老 | 第20-21页 |
| ·体细胞不亲和性 | 第21页 |
| ·减数分裂、孢子释放和孢子萌发 | 第21-22页 |
| ·发育和组织形成 | 第22-23页 |
| 3 真菌细胞凋亡的激发 | 第23-30页 |
| ·物理和环境损伤 | 第23-26页 |
| ·抗真菌试剂和细胞毒性药物 | 第26-28页 |
| ·致死突变 | 第28-30页 |
| 4 细胞死亡相关的信号途径 | 第30-33页 |
| ·Ras和cAMP | 第30-31页 |
| ·3-羟基磷脂酰肌醇激酶和蛋白激酶B信号途径 | 第31页 |
| ·CDC55、TPD3(蛋白磷酸酶2A) | 第31页 |
| ·钙调磷酸酶、钙调素与钙联接蛋白 | 第31-32页 |
| ·鞘脂类神经酰胺和蛋白激酶C | 第32-33页 |
| ·MAP激酶级联 | 第33页 |
| 5 定型、效应分子和抑制子 | 第33-39页 |
| ·活性氧的物质 | 第33-35页 |
| ·细胞色素c和线粒体的功能 | 第35-36页 |
| ·凋亡酶caspases | 第36-37页 |
| ·核酸酶 | 第37-39页 |
| ·内源的BCL-2家族蛋白 | 第39页 |
| 6 结论 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-57页 |
| 下篇 研究内容 | 第57-137页 |
| 第一章 营养体不亲和性诱导栗疫病菌菌株间融合细胞的程序性细胞死亡 | 第59-71页 |
| 摘要 | 第59页 |
| ABSTRACT | 第59-61页 |
| 1 材料与方法 | 第61-62页 |
| ·供试菌株与培养方法 | 第61页 |
| ·DNA的提取与DNA电泳分析 | 第61-62页 |
| ·菌株配对培养 | 第62页 |
| ·融合细胞细胞核形态特征 | 第62页 |
| ·融合细胞活性氧检测 | 第62页 |
| ·融合细胞脂肪粒检测 | 第62页 |
| ·融合细胞死活检测 | 第62页 |
| ·融合细胞外观变化 | 第62页 |
| 2 结果与分析 | 第62-67页 |
| ·栗疫病菌细胞融合后的DNA电泳检测 | 第62-64页 |
| ·细胞核形态 | 第64页 |
| ·活性氧检测 | 第64页 |
| ·脂肪粒的积累 | 第64页 |
| ·细胞死活鉴定 | 第64-67页 |
| ·融合细胞外观的变化 | 第67页 |
| 3 讨论 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-71页 |
| 第二章 外源过氧化氢对栗疫病菌低毒力菌株EP713四种抗氧化酶的影响 | 第71-85页 |
| 摘要 | 第71页 |
| ABSTRACT | 第71-73页 |
| 1 材料与方法 | 第73-76页 |
| ·供试菌株与培养基 | 第73-75页 |
| ·试剂配制 | 第75页 |
| ·菌丝收集 | 第75页 |
| ·酶液提取 | 第75页 |
| ·酶活性测定方法 | 第75-76页 |
| 2 结果与分析 | 第76-80页 |
| ·不同浓度过氧化氢对栗疫病菌野生型和低毒力菌株影响 | 第76-77页 |
| ·抗氧化酶活性测定 | 第77-80页 |
| 3 讨论 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-85页 |
| 第三章 过氧化氢诱导栗疫病菌分生孢子细胞死亡 | 第85-101页 |
| 摘要 | 第85页 |
| ABSTRACT | 第85-87页 |
| 1 材料与方法 | 第87-89页 |
| ·供试菌株与培养基 | 第87页 |
| ·试验方法 | 第87-89页 |
| 2 结果与分析 | 第89-96页 |
| ·过氧化氢对栗疫病菌分生孢子萌发率的影响 | 第89页 |
| ·栗疫病菌分生孢子处理后细胞核的变化 | 第89-92页 |
| ·活性氧检测 | 第92-94页 |
| ·一氧化氮的测定 | 第94-95页 |
| ·DNA的降解 | 第95-96页 |
| 3 讨论 | 第96-97页 |
| 参考文献 | 第97-101页 |
| 第四章 栗疫病菌核糖基化因子1(ARF1)基因功能的表型效应 | 第101-119页 |
| 摘要 | 第101页 |
| ABSTRACT | 第101-103页 |
| 1 材料与方法 | 第103-107页 |
| ·供试菌株 | 第103页 |
| ·供试药剂和培养基 | 第103-104页 |
| ·栗疫病菌的菌丝基因组DNA、RNA的提取和cDNA合成 | 第104-105页 |
| ·CpARF1基因克隆、载体构建及序列分析 | 第105页 |
| ·Southern杂交 | 第105页 |
| ·栗疫病菌的转化 | 第105-106页 |
| ·CpARF1转化子对硫酸铜与氟化钠的敏感性测定 | 第106页 |
| ·CpARF1转化子产孢情况与漆酶产生的测定 | 第106页 |
| ·CpARF1转化子PCR验证 | 第106页 |
| ·CpARF1转录水平的分析 | 第106页 |
| ·CpARF1转化子致病性测定 | 第106-107页 |
| 2 结果与分析 | 第107-114页 |
| ·CpARF1基因克隆与序列分析 | 第107-108页 |
| ·CpARF1转化子对CuSO_4与NaF的敏感性测定 | 第108页 |
| ·CpARF1转化子漆酶产生测定 | 第108页 |
| ·CpARF1转化子产孢情况测定 | 第108页 |
| ·CpARF1的转录水平分析 | 第108-109页 |
| ·CpARF1转化子PCR验证 | 第109页 |
| ·CpARF1转化子致病性测定 | 第109-114页 |
| 3 讨论 | 第114-115页 |
| 参考文献 | 第115-119页 |
| 第五章 栗疫病菌泛素核糖体L40融合蛋白基因功能的表型效应 | 第119-137页 |
| 摘要 | 第119页 |
| ABSTRACT | 第119-121页 |
| 1 材料与方法 | 第121-125页 |
| ·供试菌株 | 第121页 |
| ·供试药剂和培养基 | 第121-123页 |
| ·栗疫病菌的菌丝基因组DNA、RNA的提取和cDNA合成 | 第123页 |
| ·CpUFP基因克隆、载体构建及序列分析 | 第123页 |
| ·Southern杂交 | 第123-124页 |
| ·栗疫病菌的转化 | 第124页 |
| ·CpUFP转化子对过氧化氢与氯化钠的敏感性测定 | 第124页 |
| ·CpUFP转化子产孢情况与漆酶产生的测定 | 第124页 |
| ·CpUFP PCR验证转化子 | 第124页 |
| ·CpUFP转录水平的分析 | 第124-125页 |
| ·CpUFP转化子致病性测定 | 第125页 |
| 2 结果与分析 | 第125-131页 |
| ·CpUFP基因克隆与序列分析 | 第125-126页 |
| ·CpUFP转化子对过氧化氢与氯化钠的敏感性测定 | 第126页 |
| ·CpUFP转化子漆酶产生测定 | 第126页 |
| ·CpUFP转化子产孢情况测定 | 第126页 |
| ·CpUFP的转录水平分析 | 第126页 |
| ·CpUFP转化子PCR验证 | 第126页 |
| ·CpUFP转化子致病性测定 | 第126-131页 |
| 3 讨论 | 第131-133页 |
| 参考文献 | 第133-137页 |
| 附表1 真菌内源与凋亡细胞死亡相关的基因 | 第137-142页 |
| 附表2 有关缩写 | 第142-144页 |
| 攻读博士学位期间发表的研究论文 | 第144-145页 |
| 致谢 | 第145页 |
