首页--农业科学论文--畜牧、动物医学、狩猎、蚕、蜂论文--动物医学(兽医学)论文--兽医传染病学论文--病毒病论文

口蹄疫病毒Lpro和3Cpro调控宿主抗病毒天然免疫反应的分子机制研究

摘要第1-10页
Abstract第10-15页
缩略语表第15-19页
第1章 文献综述第19-36页
   ·天然免疫简介第19页
   ·RLRs介导的抗病毒天然免疫第19-26页
     ·RLRs的分子结构第20页
     ·RLRs识别病毒RNA第20-22页
     ·IPS-1是RLRs信号通路的重要衔接蛋白第22-23页
     ·病毒诱导的Ⅰ/Ⅲ型干扰素转录激活机制第23-24页
     ·Ⅰ/Ⅲ型干扰素介导抗病毒作用第24-25页
     ·病毒诱导的RANTES转录激活机制第25-26页
   ·RLRs信号通路的调节机制第26-29页
     ·泛素化调节RLRs信号通路第26-27页
     ·去泛素化调节RLRs信号通路第27-28页
     ·RLRs信号通路的其他调节机制第28-29页
   ·病毒逃避RLRs信号通路的策略第29-30页
   ·口蹄疫简介第30-31页
   ·口蹄疫病毒分子生物学特征第31-32页
   ·FMDV逃逸宿主天然免疫应答的机制第32-36页
     ·FMDV能引起宿主淋巴细胞的减少第32页
     ·FMDV抑制树突状细胞产生干扰素第32-33页
     ·FMDV破坏NK细胞功能第33-34页
     ·FMDV蛋白酶参与宿主的免疫抑制第34-36页
第2章 研究目的和意义第36-37页
第3章 材料与方法第37-50页
   ·试验材料第37-40页
     ·毒株与菌株第37页
     ·细胞以及转染相关材料第37页
     ·载体构建所需材料及获赠载体第37-40页
     ·Western Bolt以及免疫共沉淀实验所需材料第40页
   ·实验方法第40-50页
     ·载体构建第40-46页
       ·猪天然免疫效应分子启动子荧光素酶报告载体的构建第40-42页
       ·猪天然免疫通路相关信号分子表达载体的构建第42-44页
       ·IPS-1 RNAi载体构建第44-45页
       ·FMDV L~(pro)表达载体的构建第45-46页
     ·半定量RT-PCR检测不同组织中IPS-1的mRNA含量第46页
     ·双荧光素酶报告实验第46-47页
     ·实时定量RT-PCR检测基因mRNA水平第47页
     ·激光共聚焦显微镜观察第47页
     ·Western Blot样品制备第47-48页
     ·免疫共沉淀(Co-Immunoprecipitation,CO-IP)技术检测蛋白泛素化修饰第48页
     ·体外去泛素化实验第48页
     ·猪IFN-λ1抗FMDV增殖第48-49页
     ·统计学方法第49-50页
第4章 结果与分析第50-103页
   ·猪天然免疫效应分子启动子荧光素酶报告系统的建立第50-62页
     ·猪IFN-β启动子及其NF-κB结合位点荧光素酶报告系统的建立第50-53页
       ·猪IFN-β启动子及其4个重复的NF-κB结合位点序列的荧光素酶载体的构建第50-51页
       ·Poly(dA:dT)/poly(I:C)在PK-15细胞中诱导猪IFN-β的表达第51-53页
     ·猪RANTES启动子荧光素酶报告系统的建立第53-62页
       ·猪RANTES基因5’端启动子序列分析第53页
       ·猪RANTES启动子在PK-15细胞中的转录激活分析第53-55页
       ·Poly(dA:dT)/poly(I:C)在PK-15细胞中诱导猪RANTES的表达第55-57页
       ·猪RANTES启动子的不同区域对poly(dA:dT)/poly(I:C)诱导的RANTES启动子活性的影响第57-59页
       ·IRF-3/7在poly(dA:dT)/poly(I:C)诱导猪RANTES表达中的作用第59-62页
   ·猪天然免疫信号通路相关分子的克隆第62-71页
     ·猪β-干扰素启动子刺激物1(IPS-1)的克隆以及功能鉴定第62-70页
       ·猪IPS-1克隆和序列分析第62-64页
       ·猪IPS-1 mRNA组织表达差异分析第64-65页
       ·猪IPS-1的亚细胞定位第65-66页
       ·猪IPS-1通过激活NF-κB和IRF-3/7诱导Ⅰ型干扰素的产生第66-68页
       ·猪IPS-1参与poly(I:C)诱导的Ⅰ型干扰素第68-70页
     ·猪天然免疫信号通路其他相关分子的克隆第70-71页
   ·口蹄疫病毒L~(pro)和3C~(pro)调控宿主天然免疫反应及其分子机制第71-103页
     ·FMDV L~(pro)通过下调IRF-3/7的表达抑制poly(I:C)诱导的Ⅰ型干扰素转录第71-79页
       ·FMDV L~(pro)抑制poly(I:C)诱导的IFN-a1/β转录第71-72页
       ·FMDV L~(pro)通过阻碍IRF-3/7和NF-KB的活化抑制IFN-α1/β启动子的激活第72-73页
       ·FMDV L~(pro)显著抑制多种IRFs依赖的细胞因子转录第73-74页
       ·FMDV L~(pro)抑制IRF-3/7介导的IFN-α1/β启动子激活第74-75页
       ·FMDV L~(pro)下调IRF-3/7蛋白的表达第75-77页
       ·FMDV L~(pro)的蛋白酶活性以及SAP结构域参与其下调IRF-3/7蛋白的表达第77-79页
     ·FMDV L~(pro)作为病毒编码的去泛素化蛋白酶负调控Ⅰ型干扰素的产生第79-89页
       ·生物信息学分析显示FMDV L~(pro)可能是病毒编码的去泛素化蛋白酶第79-80页
       ·FMDV Lb~(pro)在体外能切割K48和K63连接的多聚泛素链第80-81页
       ·FMDV Lb~(pro)在体内去泛素化活性检测第81-83页
       ·FMDV Lb~(pro)的去泛素化活性不依赖其切割eIF-4G的活性第83-85页
       ·FMDV Lb~(pro)的去泛素化活性参与其抑制Ⅰ型干扰素的产生第85-87页
       ·FMDV Lb~(pro)抑制RIG-I、TBK1、TRAF3、TRAF6的去泛素化第87-89页
     ·FMDV L~(pro)通过抑制IFN-λ1转录负调控IFN-k1的抗病毒作用第89-95页
       ·猪IFN-λ1抑制FMDV的增殖第89页
       ·猪IFN-λ1能显著诱导多种抗病毒蛋白的表达第89-90页
       ·FMDV感染不能诱导IFN-M的表达第90-91页
       ·FMDV L~(pro)参与抑制IFN-λ1启动子的激活第91-93页
       ·FMDV Lb~(pro)抑制RLRs介导的IFN-λ1启动子激活第93页
       ·FMDV L~(pro)的蛋白酶活性以及SAP结构域参与其抑制IFN-λ1启动子的激活第93-95页
     ·FMDV L~(prp)抑制poly(I:C)诱导的RANTES转录的分子机制研究第95-99页
       ·FMDV L~(pro)抑制poly(I:C)诱导的RANTES的转录第95页
       ·FMDV L~(pro)通过IRSE抑制poly(I:C)诱导的RANTES启动子活性第95-97页
       ·FMDV L~(pro)抑制IRF-3/7介导的RANTES启动子激活第97-98页
       ·FMDV L~(pro)的蛋白酶活性以及SAP结构域参与其抑制由poly(I:C)诱导的RANTES表达第98-99页
     ·FMDV 3C~(pro)蛋白酶抑制I型干扰素产生的分子机制初步研究第99-103页
       ·FMDV 3C~(pro)抑制poly(I:C)诱导的IFN-α1/β转录第99-100页
       ·FMDV 3C~(pro)通过阻碍IRF-3/7的活化抑制IFN-α1/β启动子的激活第100页
       ·FMDV 3C~(pro)显著抑制多种IRFs依赖的细胞因子转录第100-101页
       ·FMDV 3C~(pro)抑制RLRs介导的IFN-α1/β启动子激活第101-103页
第5章 讨论与结论第103-115页
   ·讨论第103-113页
     ·猪IFN-β启动子及其NF-κB结合位点荧光素酶报告系统的建立第103-104页
     ·猪RANTES启动子荧光素酶报告系统的建立第104-105页
     ·猪天然免疫信号通路相关分子的克隆第105-106页
     ·FMDV L~(pro)通过下调IRF-3/7的表达抑制poly(I:C)诱导的Ⅰ型干扰素转录第106-107页
     ·FMDV L~(pro)作为病毒编码的去泛素化蛋白酶负调控Ⅰ型干扰素的产生第107-110页
     ·FMDV L~(pro)通过抑制IFN-M转录负调控IFN-M的抗病毒作用第110-111页
     ·FMDV L~(pro)抑制poly(I:C)诱导的RANTES转录的分子机制研究第111-112页
     ·FMDV 3C~(pro)蛋白酶抑制Ⅰ型干扰素产生的分子机制初步研究第112-113页
   ·结论第113-115页
参考文献第115-135页
致谢第135-136页
附录第136-138页

论文共138页,点击 下载论文
上一篇:玉米赤霉烯酮联合大豆异黄酮对青年母猪生殖器官发育、肝脏损伤和组织玉米赤霉烯酮残留的影响及其机制研究
下一篇:伪狂犬病毒和猪传染性胃肠炎病毒诱导β干扰素产生的分子机制研究