| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩略词 | 第8-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-25页 |
| 1 植物激素 | 第14-17页 |
| ·生长素在植物生长发育中的作用 | 第15页 |
| ·生长素的合成及其在植物体内的存在状态 | 第15-16页 |
| ·生长素在植物体内的分布 | 第16页 |
| ·生长素极性运输研究进展 | 第16-17页 |
| 2 生长素相关基因的研究 | 第17-21页 |
| ·生长素结合蛋白基因的研究 | 第17-20页 |
| ·生长素运出载体蛋白基因PIN | 第20-21页 |
| ·生长素运输的调控机制研究 | 第21页 |
| 3 植物激素的提取与检测技术 | 第21-23页 |
| ·植物激素的提取技术 | 第21-22页 |
| ·植物激素测定技术研究进展 | 第22-23页 |
| 4 研究目的与意义 | 第23-25页 |
| 第二章 花生花针期生长素的变化与分布 | 第25-41页 |
| 1 材料与试剂 | 第25-26页 |
| ·试验材料 | 第25页 |
| ·主要仪器和设备 | 第25页 |
| ·试剂 | 第25-26页 |
| 2 实验方法 | 第26-27页 |
| ·生长素及其结合态的提取与纯化 | 第26-27页 |
| ·标准溶液的配制 | 第27页 |
| ·液相色谱-质谱法 | 第27页 |
| 3 结果与分析 | 第27-38页 |
| ·生长素及其结合态提取纯化方法的建立 | 第27-29页 |
| ·花生IAA含量分析 | 第29-34页 |
| ·花生IAA-Ile含量的变化与分析 | 第34-37页 |
| ·花生游离态IAA与结合态IAA相关分析 | 第37-38页 |
| 4 讨论 | 第38-40页 |
| ·生长素的提取纯化方法 | 第38-39页 |
| ·花生不同生长时期生长素的存在形式与含量 | 第39页 |
| ·不同处理对花生各组织IAA及IAA-Ile含量的影响 | 第39-40页 |
| 5 本章小结 | 第40-41页 |
| 第三章 花生花针期其他植物激素的分析 | 第41-58页 |
| 1 材料与仪器 | 第41页 |
| ·试验材料 | 第41页 |
| ·试剂 | 第41页 |
| ·仪器 | 第41页 |
| 2 方法 | 第41-44页 |
| ·提取纯化方法 | 第41-43页 |
| ·标准溶液的配制 | 第43页 |
| ·检测方法 | 第43-44页 |
| 3 结果与分析 | 第44-55页 |
| ·花生样品中JA的提取检测方法的建立 | 第44-46页 |
| ·花生中Z、ZR及ABA检测方法的建立 | 第46-48页 |
| ·花生其他植物激素含量分析 | 第48-55页 |
| 4 讨论 | 第55-56页 |
| ·提取方法的选择 | 第55-56页 |
| ·花生不同生长时期植物激素间的相互关系研究 | 第56页 |
| ·花生不同生长时期JA、ABA、Z、ZR的含量分析 | 第56页 |
| 5 本章小结 | 第56-58页 |
| 第四章 花生ABP1的克隆与表达分析 | 第58-82页 |
| 1 材料与试剂 | 第58-59页 |
| ·植物材料 | 第58页 |
| ·仪器与设备 | 第58页 |
| ·菌株 | 第58页 |
| ·分子生物学试剂 | 第58-59页 |
| 2 实验方法 | 第59-67页 |
| ·花生总RNA提取及纯化 | 第59-60页 |
| ·逆转录合成cDNA | 第60页 |
| ·花生生长素结合蛋白基因的RT-PCR扩增 | 第60-64页 |
| ·Real time PCR表达分析引物设计 | 第64-65页 |
| ·Real Time PCR表达分析 | 第65-66页 |
| ·分析方法 | 第66-67页 |
| 3 结果与分析 | 第67-79页 |
| ·花生ABP1 cDNA全长的克隆 | 第67-68页 |
| ·花生ABP1的生物信息学分析 | 第68-75页 |
| ·花生ABP1 的表达分析 | 第75-78页 |
| ·花生IAA含量与ABP1表达的相关分析 | 第78-79页 |
| 4 讨论 | 第79-80页 |
| ·ABP1的结构和功能预测 | 第79页 |
| ·ABP1在花生不同器官和组织中的表达 | 第79-80页 |
| ·IAA含量与ABP1表达相关分析 | 第80页 |
| 5 本章小结 | 第80-82页 |
| 第五章 花生PIN1表达及与IAA含量相关分析 | 第82-91页 |
| 1 材料与试剂 | 第82页 |
| ·植物材料 | 第82页 |
| ·仪器与设备 | 第82页 |
| ·菌株 | 第82页 |
| ·分子生物学试剂 | 第82页 |
| 2 实验方法 | 第82-84页 |
| ·花生RNA的提取及RNA质量检测 | 第82-83页 |
| ·逆转录合成cDNA | 第83页 |
| ·RT-PCR反应 | 第83页 |
| ·PCR产物的TA克隆与测序 | 第83页 |
| ·Real time PCR表达分析引物设计 | 第83页 |
| ·Real Time PCR | 第83-84页 |
| 3 结果与分析 | 第84-89页 |
| ·花生生长素输出蛋白基因PIN1 cDNA片段的克隆 | 第84-85页 |
| ·生长素输出蛋白基因PIN1在花生不同器官的表达分析 | 第85-87页 |
| ·PIN1表达与花生IAA及IAA-Ile含量分析 | 第87-89页 |
| 4 讨论 | 第89-90页 |
| 5 本章小结 | 第90-91页 |
| 第六章 花生再生体系的建立 | 第91-96页 |
| 1 材料与方法 | 第91-92页 |
| ·材料 | 第91-92页 |
| ·培养方法 | 第92页 |
| 2 结果与分析 | 第92-94页 |
| ·外植体的获得 | 第92-93页 |
| ·茎尖组织培养阶段 | 第93-94页 |
| ·茎尖增殖培养 | 第94页 |
| ·植株再生和生根阶段 | 第94页 |
| 3 讨论 | 第94-95页 |
| 4 本章小结 | 第95-96页 |
| 全文总结 | 第96-99页 |
| 1 结论 | 第96-97页 |
| 2 本研究的创新点 | 第97-98页 |
| 3 进一步工作设想 | 第98-99页 |
| 参考文献 | 第99-105页 |
| 致谢 | 第105-106页 |
| 作者简历 | 第106页 |
