| 摘要 | 第5-8页 |
| abstract | 第8-11页 |
| 第一章 引言 | 第16-20页 |
| 第二章 实验材料、方法 | 第20-38页 |
| 2.1 实验材料与器械 | 第20-22页 |
| 2.1.1 实验对象 | 第20页 |
| 2.1.2 主要实验试剂 | 第20-21页 |
| 2.1.3 主要实验仪器及耗材 | 第21-22页 |
| 2.2 溶液的配制 | 第22-25页 |
| 2.3 实验方法 | 第25-37页 |
| 2.3.1 实验分组 | 第25-26页 |
| 2.3.2 超净台的使用 | 第26页 |
| 2.3.3 小鼠的BMMSCs的分离及原代培养 | 第26页 |
| 2.3.4 小鼠的BMMSCs的传代培养 | 第26-27页 |
| 2.3.5 小鼠Sca-1~+骨髓细胞的分离纯化 | 第27-28页 |
| 2.3.6 小鼠Sca-1~+骨髓细胞的传代培养 | 第28页 |
| 2.3.7 MC3T3-E1的传代培养 | 第28页 |
| 2.3.8 实验细胞的冻存 | 第28-29页 |
| 2.3.9 实验细胞的复苏 | 第29-30页 |
| 2.3.10 TNF-α处理贴壁细胞 | 第30页 |
| 2.3.11 MC3T3-E1与Sca-1~+骨髓细胞的共培养 | 第30页 |
| 2.3.12 细胞增殖试验(CCK8法) | 第30-31页 |
| 2.3.13 小鼠Sca-1~+骨髓细胞的比例测定 | 第31页 |
| 2.3.14 贴壁细胞总蛋白的提取 | 第31-32页 |
| 2.3.15 蛋白浓度测定 | 第32-33页 |
| 2.3.16 蛋白印迹法(Western blot) | 第33-35页 |
| 2.3.17 MethoCult半固体培养基的分装 | 第35页 |
| 2.3.18 Sca-1~+骨髓细胞的集落形成单位实验(CFU) | 第35-37页 |
| 2.4 统计学方法 | 第37-38页 |
| 第三章 实验结果 | 第38-50页 |
| 3.1 TNF-α浓度的筛选 | 第38-39页 |
| 3.2 实验细胞经TNF-α处理后N-cadherin、p-Erk1/2以及p-Akt的表达 | 第39-43页 |
| 3.2.1 MC3T3-E1经TNF-α处理后其粘附分子N-cadherin的表达 | 第39页 |
| 3.2.2 MC3T3-E1经TNF-α处理后其p-Erk1/2及p-Akt的表达 | 第39-42页 |
| 3.2.3 小鼠BMMSCs经TNF-α处理后其N-cadherin、p-Erk1/2和p-Akt的表达 | 第42-43页 |
| 3.3 Erk抑制剂浓度的筛选 | 第43-44页 |
| 3.4 Erk抑制剂处理MC3T3-E1后N-cadherin和p-Erk1/2的表达 | 第44-45页 |
| 3.5 小鼠Sca-1~+细胞在骨髓细胞中的比例 | 第45-46页 |
| 3.6 StemspanSFEM培养液对细胞形态以及N-cadherin表达的影响 | 第46-48页 |
| 3.7 TNF-α预处理的MC3T3-E1细胞对Sca-1~+骨髓造血细胞体外扩增和分化的影响 | 第48-50页 |
| 第四章 讨论 | 第50-56页 |
| 第五章 结论 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第65页 |
