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MBD3通过去甲基化转录调控HIF2α在肿瘤细胞中的作用

中文摘要第6-7页
ABSTRACT第7页
前言第8-12页
材料和方法第12-36页
    1.材料第12-14页
        1.1 细胞及质粒第12页
        1.2 shRNA及siRNA第12-13页
        1.3 试剂和抗体第13-14页
        1.4 耗材和仪器第14页
    2.方法第14-36页
        2.1 细胞培养第14-16页
        2.2 siRNA干扰第16-17页
        2.3 质粒构建第17-19页
        2.4 质粒瞬时转染第19页
        2.5 稳定细胞株的建立第19-20页
        2.6 免疫印迹第20-25页
        2.7 RT-PCR和qPCR第25-27页
        2.8 免疫荧光第27-28页
        2.9 EPAS1启动子区甲基化检测第28-31页
        2.10 ChIP (Chromatin Immunoprecipitation,染色质免疫沉淀)第31-33页
        2.11 细胞增殖实验第33-34页
        2.12 HUVEC微管形成实验第34-35页
        2.13 统计学分析第35-36页
结果第36-60页
    1. HIF1α和HIF2α在缺氧过程中存在表达差异第36-39页
    2. HIF2α转录水平及转录活性受甲基化调控第39-42页
    3. MBD3调控MDA-MB-468乳腺癌细胞中EPAS1的转录第42-45页
    4. HIF1α和HIF2α不调控MBD3蛋白表达第45-47页
    5. MBD3调控MDA-MB-468乳腺癌细胞中EPAS1启动子的甲基化第47-51页
    6. 内源性MBD3调控MDA-MB-468乳腺癌细胞中EPAS1的转录第51-53页
    7. 内源性MBD3调控7860肾癌细胞中EPAS1的转录第53-56页
    8. 内源性MBD3调控EPAS1启动子区CpG甲基化第56-58页
    9. EPAS1和MBD3 mRNA在临床肿瘤组织标本中的表达第58-60页
讨论第60-63页
小结第63-64页
参考文献第64-75页
文献综述第75-109页
    参考文献第91-109页
缩略词第109-111页
攻读学位期间发表论文第111-112页
致谢第112页

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