| 致谢 | 第5-6页 |
| 中文摘要 | 第6-8页 |
| 英文摘要 | 第8-10页 |
| 缩略词表 | 第11-15页 |
| 引言 | 第15-19页 |
| 第一部分 MST1在大鼠蛛网膜下腔出血后的表达及意义 | 第19-35页 |
| 1.1 前言 | 第19-21页 |
| 1.2 材料与方法 | 第21-29页 |
| 1.2.1 实验动物 | 第21页 |
| 1.2.2 实验仪器和设备 | 第21页 |
| 1.2.3 实验材料和试剂 | 第21-22页 |
| 1.2.4 试剂配置 | 第22-23页 |
| 1.2.5 实验方法 | 第23-29页 |
| 1.3 结果 | 第29-31页 |
| 1.3.1 死亡率和SAH出血评分 | 第29页 |
| 1.3.2 SAH后MST1的表达量随时间变化曲线 | 第29-30页 |
| 1.3.3 SAH后MST1与神经元细胞共定位情况 | 第30-31页 |
| 1.4 讨论 | 第31-32页 |
| 1.5 小结 | 第32-33页 |
| 参考文献 | 第33-35页 |
| 第二部分 硫化氢在大鼠蛛网膜下腔出血后的抗神经元凋亡及神经保护作用 | 第35-49页 |
| 2.1 前言 | 第35-37页 |
| 2.2 材料与方法 | 第37-40页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第37页 |
| 2.2.2 实验仪器和设备 | 第37页 |
| 2.2.3 实验材料和试剂 | 第37页 |
| 2.2.4 试剂配置 | 第37页 |
| 2.2.5 实验方法 | 第37-40页 |
| 2.3 结果 | 第40-45页 |
| 2.3.1 死亡率和SAH出血评分 | 第40页 |
| 2.3.2 NaHS治疗改善了大鼠SAH后短期神经功能 | 第40-41页 |
| 2.3.3 NaHS治疗改善了大鼠SAH后长期期神经功能 | 第41-43页 |
| 2.3.4 NaHS治疗减轻了大鼠脑水肿情况 | 第43-44页 |
| 2.3.5 NaHS治疗降低了SAH后神经元凋亡 | 第44-45页 |
| 2.4 讨论 | 第45-46页 |
| 2.5 小结 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-49页 |
| 第三部分 硫化氢通过调节ROS-MST1通路抑制神经元细胞凋亡 | 第49-63页 |
| 3.1 前言 | 第49-51页 |
| 3.2 材料与方法 | 第51-53页 |
| 3.2.1 实验动物 | 第51页 |
| 3.2.2 实验仪器和设备 | 第51页 |
| 3.2.3 实验材料和试剂 | 第51页 |
| 3.2.4 试剂配置 | 第51页 |
| 3.2.5 实验方法 | 第51-53页 |
| 3.3 结果 | 第53-57页 |
| 3.3.1 死亡率和SAH出血评分 | 第53页 |
| 3.3.2 Chelerythrine破坏了NaHS对大鼠神经功能的改善作用 | 第53-54页 |
| 3.3.3 Chelerythrine逆转了NaHS对凋亡蛋白的调控 | 第54-55页 |
| 3.3.4 延迟使用NaHS能够改善SAH造成的神经功能损伤 | 第55-57页 |
| 3.4 讨论 | 第57-58页 |
| 3.5 小结 | 第58-60页 |
| 参考文献 | 第60-63页 |
| 综述 | 第63-75页 |
| 参考文献 | 第70-75页 |
| 作者简历 | 第75页 |
