| 摘要 | 第4-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 中英文缩略词 | 第12-13页 |
| 前言 | 第13-15页 |
| 材料 | 第15-19页 |
| 1.1 实验仪器 | 第15页 |
| 1.2 试剂、试剂盒 | 第15-16页 |
| 1.3 试剂配制 | 第16-19页 |
| 方法 | 第19-29页 |
| 2.1 建立大鼠心肌I1R24h模型 | 第19-20页 |
| 2.2 Evansblue-TTC染色 | 第20页 |
| 2.3 大鼠外周血cTnI检测 | 第20-21页 |
| 2.4 流式细胞术检测大鼠外周血中性粒细胞 | 第21页 |
| 2.5 MPO免疫组织化学染色 | 第21-22页 |
| 2.6 HE染色 | 第22-23页 |
| 2.7 TUNEL | 第23页 |
| 2.8 H9c2细胞复苏及传代培养 | 第23-24页 |
| 2.9 大鼠外周血中性粒细胞分离 | 第24-25页 |
| 2.10 大鼠外周血中性粒细胞鉴定 | 第25页 |
| 2.11 建立H9c2细胞H/R模型 | 第25-26页 |
| 2.12 MTS检测 | 第26页 |
| 2.13 细胞RNA的提取 | 第26页 |
| 2.14 RNA反转录成cDNA | 第26-27页 |
| 2.15 实时荧光定量PCR(QuantitativeReal-timePCR,qPCR) | 第27页 |
| 2.16 统计学分析 | 第27-29页 |
| 实验结果 | 第29-43页 |
| 3.sDR5-Fc抑制中性粒细胞的浸润减轻心肌I/R注损伤 | 第29-37页 |
| 3.1 成功建立大鼠心肌I1R24h心梗模型 | 第29-30页 |
| 3.2 sDR5-Fc减轻大鼠I/R损伤 | 第30-31页 |
| 3.2.1 sDR5-Fc减少大鼠心肌I/R损伤面积 | 第30-31页 |
| 3.2.2 sDR5-Fc显著降低大鼠外周血cTnI的含量 | 第31页 |
| 3.3 sDR5-Fc抑制中性粒细胞浸润到受损的心肌组织 | 第31-32页 |
| 3.4 sDR5-Fc抑制中性粒细胞浸润减轻大鼠心肌I/R损伤 | 第32-37页 |
| 3.4.1 建立耗竭大鼠外周血中性粒细胞模型 | 第32-33页 |
| 3.4.2 sDR5-Fc抑制中性粒细胞浸润减轻心肌损伤面积 | 第33-34页 |
| 3.4.3 sDR5-Fc抑制中性粒细胞浸润改善心肌组织的完整性 | 第34-35页 |
| 3.4.4 sDR5-Fc抑制中性粒细胞浸润减少心肌细胞的凋亡 | 第35-37页 |
| 4sDR5-Fc抑制中性粒细胞的活化减轻H9c2细胞损伤 | 第37-43页 |
| 4.1 大鼠外周血中性粒细胞分离及鉴定 | 第37-39页 |
| 4.1.1 大鼠外周血中各型白细胞所占的比例 | 第37页 |
| 4.1.2 成功分离大鼠外周血中性粒细胞 | 第37-38页 |
| 4.1.3 大鼠外周血中性粒细胞鉴定 | 第38-39页 |
| 4.2 成功建立H9c2细胞H/R与中性粒细胞共培养模型 | 第39-40页 |
| 4.2.1 建立H9c2细胞H2R3h模型 | 第39-40页 |
| 4.2.2 建立H9c2细胞H/R与中性粒细胞共培养模型 | 第40页 |
| 4.3 sDR5-Fc抑制中性粒细胞活化减轻H9c2细胞损伤 | 第40-41页 |
| 4.4 sDR5-Fc抑制大鼠中性粒细胞TNF-α、IL-1β的表达 | 第41-43页 |
| 讨论 | 第43-47页 |
| 结论 | 第47-49页 |
| 参考文献 | 第49-53页 |
| 综述 | 第53-69页 |
| 参考文献 | 第63-69页 |
| 致谢 | 第69-71页 |
| 在读期间参加的学术活动及成果 | 第71-72页 |
