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NR6A1基因启动子的克隆及其在氧化损伤中的转录调控分析

摘要第5-7页
Abstract第7-8页
主要缩略词表第14-15页
第1章 绪论第15-28页
    1.1 真核基因的转录调控第15-17页
        1.1.1 真核基因转录调控机制第16-17页
    1.2 转录因子与基因表达调控第17-19页
        1.2.1 转录因子简介第17-18页
        1.2.2 转录因子SP1与基因表达调控第18-19页
    1.3 氧化应激损伤与疾病发生第19-24页
        1.3.1 氧化应激与活性氧第21页
        1.3.2 氧化损伤标志分子OGG1第21-23页
        1.3.3 氧化损伤标志分子SIRT1第23-24页
    1.4 孤核受体简介第24-26页
    1.5 NR6A1基因简介第26页
    1.6 论文研究思路第26-28页
第2章 NR6A1基因启动子的结构与转录活性分析第28-46页
    2.1 前言第28页
    2.2 材料与方法第28-36页
        2.2.1 实验仪器第28-29页
        2.2.2 材料与试剂第29-30页
        2.2.3 实验方法第30-36页
    2.3 结果与讨论第36-45页
        2.3.1 生物信息学分析NR6A1基因启动子区域及转录因子结合位点第36-39页
        2.3.2 NR6A1启动子区报告基因质粒的构建第39-43页
        2.3.3 NR6A1启动子活性的鉴定第43-45页
    2.4 本章小结第45-46页
第3章 SP1对NR6A1基因启动子活性的调控第46-56页
    3.1 前言第46页
    3.2 材料与方法第46-50页
        3.2.1 实验仪器第46-47页
        3.2.2 材料与试剂第47页
        3.2.3 实验方法第47-50页
    3.3 结果与讨论第50-54页
        3.3.1 过表达SP1对NR6A1启动子活性的调控第50-52页
        3.3.3 干扰SP1表达对NR6A1启动子活性的影响第52-54页
    3.4 本章小结第54-56页
第4章 SP1参与细胞氧化损伤中NR6A1的表达调控第56-68页
    4.1 引言第56页
    4.2 材料与方法第56-62页
        4.2.1 实验仪器第56-57页
        4.2.2 材料与试剂第57页
        4.2.3 实验方法第57-62页
    4.3 结果与讨论第62-66页
        4.3.1 建立细胞氧化损伤模型第62-63页
        4.3.2 H_20_2对NR6A1和SP1表达的影响第63-65页
        4.3.3 H_20_2对NR6A1启动子活性的影响第65页
        4.3.4 H_20_2介导下干扰SP1对NR6A1转录水平的影响第65-66页
    4.4 本章小结第66-68页
结论第68-70页
参考文献第70-77页
附录A 攻读硕士学位期间发表的论文第77-78页
致谢第78页

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