摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
缩略词 | 第8-13页 |
第一章 绪论 | 第13-34页 |
1.1 漆酶研究进展 | 第13-18页 |
1.1.1 漆酶的分类与功能 | 第13-14页 |
1.1.2 漆酶的结构及反应机理 | 第14-15页 |
1.1.3 漆酶的理化性质 | 第15-16页 |
1.1.4 漆酶分离纯化方法 | 第16-18页 |
1.1.5 漆酶基因克隆 | 第18页 |
1.2 漆酶介体系统 | 第18-24页 |
1.2.1 漆酶的氧化还原电势 | 第19-20页 |
1.2.2 常见的介体 | 第20-22页 |
1.2.3 漆酶介体系统的氧化机制 | 第22-24页 |
1.3 漆酶应用研究 | 第24-31页 |
1.3.1 染料降解应用 | 第24-26页 |
1.3.2 农药降解应用 | 第26-27页 |
1.3.3 木质素降解应用 | 第27-28页 |
1.3.4 其他领域应用 | 第28-29页 |
1.3.5 漆酶的固定化 | 第29-31页 |
1.4 栓菌属真菌漆酶研究 | 第31-33页 |
1.5 本研究的目的与意义 | 第33-34页 |
第二章 菌株筛选、鉴定、最适培养条件及其产酶特性研究 | 第34-49页 |
2.1 实验材料 | 第34页 |
2.1.1 菌株的采集与保藏 | 第34页 |
2.1.2 培养基 | 第34页 |
2.2 实验试剂 | 第34页 |
2.3 实验仪器 | 第34-35页 |
2.4 实验方法 | 第35-38页 |
2.4.1 耐受农药菌株的筛选 | 第35页 |
2.4.2 BUA-01菌株的分子鉴定 | 第35-37页 |
2.4.3 BUA-01菌丝体最适培养条件研究 | 第37-38页 |
2.4.4 Cu~(2+)对液体发酵漆酶产量的影响 | 第38页 |
2.4.5 BUA-01菌株对偶氮染料的降解作用 | 第38页 |
2.5 实验结果 | 第38-46页 |
2.5.1 菌株的筛选 | 第38-39页 |
2.5.2 形态学观察 | 第39-40页 |
2.5.3 基于ITS序列的系统发育分析 | 第40-41页 |
2.5.4 BUA-01菌丝体最适培养条件研究 | 第41-44页 |
2.5.5 Cu~(2+)对BUA-01发酵液产漆酶量的影响 | 第44-45页 |
2.5.6 BUA-01对偶氮染料的降解研究 | 第45-46页 |
2.6 分析与讨论 | 第46-48页 |
2.7 本章小结 | 第48-49页 |
第三章 BUA-01菌株胞外漆酶分离纯化、酶学特性和基因克隆 | 第49-77页 |
3.1 实验材料与仪器 | 第49-52页 |
3.1.1 菌株 | 第49页 |
3.1.2 培养基 | 第49页 |
3.1.3 实验试剂 | 第49-52页 |
3.1.4 实验器材 | 第52页 |
3.2 实验方法 | 第52-61页 |
3.2.1 酶活测定 | 第52页 |
3.2.2 漆酶的分离纯化 | 第52-54页 |
3.2.3 SDS-PAGE电泳检测 | 第54-55页 |
3.2.4 漆酶肽段测序 | 第55-56页 |
3.2.5 漆酶N末端测序 | 第56页 |
3.2.6 漆酶酶学特性实验 | 第56-57页 |
3.2.7 RNA的提取及cDNA的合成 | 第57-58页 |
3.2.8 漆酶基因核心区的克隆 | 第58-61页 |
3.3 实验结果 | 第61-74页 |
3.3.1 DEAE-Sepharose弱阴离子交换层析 | 第61-62页 |
3.3.2 SP-Sepharose强阳离子交换层析 | 第62-63页 |
3.3.3 Q-Sepharose强阴离子交换层析 | 第63-64页 |
3.3.4 漆酶分离纯化效率 | 第64页 |
3.3.5 SDS-PAGE电泳检测 | 第64-65页 |
3.3.6 漆酶肽段测序 | 第65-66页 |
3.3.7 漆酶N-末端测序 | 第66-68页 |
3.3.8 漆酶酶学特性实验 | 第68-71页 |
3.3.9 RNA提取及cDNA的合成 | 第71-72页 |
3.3.10 漆酶核心区域基因的克隆 | 第72-74页 |
3.4 分析与讨论 | 第74-75页 |
3.5 本章小结 | 第75-77页 |
第四章 漆酶/介体系统(LMS)对污染物的降解研究 | 第77-96页 |
4.1 实验材料与仪器 | 第77-79页 |
4.1.1 实验材料 | 第77页 |
4.1.2 实验仪器 | 第77-79页 |
4.2 实验方法 | 第79-81页 |
4.2.1 LMS对常见染料的降解 | 第79页 |
4.2.2 温度对LMS降解染料的影响 | 第79页 |
4.2.3 pH对LMS降解染料的影响 | 第79页 |
4.2.4 不同介体浓度对LMS降解染料的影响 | 第79-80页 |
4.2.5 LMS对乙酰甲胺磷的降解 | 第80页 |
4.2.6 LMS对黄曲霉毒素B1的降解 | 第80-81页 |
4.2.7 LMS降解染料产物的植物毒性研究 | 第81页 |
4.3 实验结果 | 第81-93页 |
4.3.1 LMS对染料的降解 | 第81-87页 |
4.3.2 温度对LMS降解染料影响 | 第87-88页 |
4.3.3 pH对LMS降解染料影响 | 第88页 |
4.3.4 不同浓度介体对LMS降解染料影响 | 第88-89页 |
4.3.5 LMS对乙酰甲胺磷的降解 | 第89-90页 |
4.3.6 LMS对黄曲霉毒素B1的降解 | 第90-91页 |
4.3.7 植物毒性检测 | 第91-93页 |
4.4 分析与讨论 | 第93-94页 |
4.5 本章小结 | 第94-96页 |
第五章 全文总结与进一步工作 | 第96-98页 |
5.1 全文结论 | 第96-97页 |
5.2 进一步工作 | 第97-98页 |
参考文献 | 第98-110页 |
致谢 | 第110-112页 |
附录 Ⅰ BUA-01菌株ITS部分序列 | 第112-113页 |
附录 Ⅱ THL漆酶N-末端测序谱图 | 第113-116页 |
附录 Ⅲ 乙酰甲胺磷HPLC谱图 | 第116-118页 |
附录 Ⅳ THL核心区部分cDNA序列 | 第118-119页 |
个人简介 | 第119页 |