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Hotair在肝纤维化中的作用及其相关机制研究

中英文缩写词对照第6-8页
中文摘要第8-11页
英文摘要第11-14页
1 引言第15-21页
2 实验材料第21-27页
    2.1 实验动物第21页
    2.2 实验取材第21-22页
    2.3 药品与试剂第22-24页
    2.4 仪器与设备第24-25页
    2.5 溶液和试剂的配制第25-27页
3 实验方法第27-51页
    3.1 动物造模、分组第27页
    3.2 肝组织病理学染色第27-28页
    3.3 免疫组织化学检测第28-29页
    3.4 荧光原位杂交第29-31页
    3.5 细胞培养第31-33页
    3.6 实时荧光定量PCR第33-37页
    3.7 Western Blot第37-41页
    3.8 细胞增殖实验(CCK-8)第41-42页
    3.9 双荧光素酶报告试验第42页
    3.10 染色质免疫共沉淀第42-44页
    3.11 质粒的制备和转化第44-51页
    3.12 统计学分析第51页
4 实验结果第51-70页
    4.1 Hotair在小鼠纤维化的肝组织中表达上调第51-53页
    4.2 Hotair在人肝纤维化组织中表达上调第53-55页
    4.3 TGF-β诱导LX-2细胞中Hotair表达上调第55-56页
    4.4 Hotair过表达促进HSCs活化和增殖第56-57页
    4.5 敲减Hotair抑制HSCs活化和增殖第57-58页
    4.6 Hotair是miR-148b的功能性靶点第58-60页
    4.7 Hotair作为ceRNA与DNMT1竞争性结合miR-148b第60-61页
    4.8 Hotair通过抑制MEG3促进HSC活化第61-63页
    4.9 Hotair和PRC2有关第63-64页
    4.10 PRC2参与Hotair介导的MEG3表达的抑制第64-66页
    4.11 Hotair促进PRC2和H3K27三甲基化到MEG3启动子减少MEG3的表达第66-68页
    4.12 Hotair与DNA结合,并且与PRC2结合MEG3启动子有关第68-70页
5 讨论第70-76页
6. 结论第76-77页
参考文献第77-92页
作者简介第92-93页
致谢第93-94页
综述第94-121页
    References第108-121页
附件第121-122页

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