| 摘要 | 第3-4页 |
| Summary | 第4-5页 |
| 缩写词英汉对照表 | 第8-9页 |
| 第一章 绪论 | 第9-20页 |
| 1 朊蛋白的构象和朊病毒毒株 | 第9-14页 |
| 1.1 朊蛋白的错误折叠和聚合 | 第10-11页 |
| 1.2 朊病毒的毒性 | 第11-13页 |
| 1.3 PrPC的抗凋亡活性 | 第13-14页 |
| 2 CK2和Bcl-2 基因及相关信号转导通路的研究进展 | 第14-18页 |
| 2.1 Wnt/β-catenin信号转导通路研究进展 | 第14-15页 |
| 2.2 NF-κB信号转导途径研究进展 | 第15-16页 |
| 2.3 CK2的功能 | 第16-18页 |
| 2.3.1 CK2在胚胎发育中的作用 | 第16页 |
| 2.3.2 CK2在配子形成过程中的作用 | 第16-17页 |
| 2.3.3 CK2在组织器官中的作用 | 第17页 |
| 2.3.4 CK2在癌症中的作用 | 第17-18页 |
| 2.3.5 CK2抑制剂 | 第18页 |
| 3 研究目的及意义 | 第18-19页 |
| 4 研究内容和方法 | 第19-20页 |
| 4.1 鸡CK2和Bcl-2 基因mRNA的SYBR Green Ⅰ实时定量RT-PCR检测法建立 | 第19页 |
| 4.2 盐酸米托蒽醌对鸡朊蛋白过表达及抑制表达DF-1 细胞增殖和凋亡的影响 | 第19-20页 |
| 第二章 鸡CK2和Bcl-2 基因的SYBR Green Ⅰ 实时定量检测法建立 | 第20-26页 |
| 1 材料与方法 | 第20-22页 |
| 1.1 材料 | 第20-21页 |
| 1.1.1 细胞与菌株 | 第20页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第20页 |
| 1.1.3 主要仪器 | 第20-21页 |
| 1.2 方法 | 第21-22页 |
| 1.2.1 细胞总RNA的提取 | 第21页 |
| 1.2.2 引物设计 | 第21页 |
| 1.2.3 cDNA合成与RT-PCR扩增 | 第21-22页 |
| 1.2.4 标准质粒的构建 | 第22页 |
| 1.2.5 标准曲线的绘制 | 第22页 |
| 1.2.6 CK2和Bcl-2 基因表达量的荧光定量RT-PCR检测与数据分析 | 第22页 |
| 2 结果与分析 | 第22-25页 |
| 2.1 电泳检测PCR扩增产物与阳性质粒的鉴定 | 第22-23页 |
| 2.2 标准曲线的建立 | 第23页 |
| 2.3 不同DF-1 细胞CK2和Bcl-2 基因的表达量 | 第23-25页 |
| 3 讨论 | 第25-26页 |
| 第三章 米托蒽醌对鸡朊蛋白过表达和抑制表达DF-1 细胞的影响 | 第26-38页 |
| 1 材料和方法 | 第26-28页 |
| 1.1 材料 | 第26页 |
| 1.1.1 细胞 | 第26页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第26页 |
| 1.1.3 主要仪器 | 第26页 |
| 1.2 方法 | 第26-28页 |
| 1.2.1 细胞培养 | 第26-27页 |
| 1.2.2 粘附试验 | 第27页 |
| 1.2.3 侵袭试验 | 第27页 |
| 1.2.4 细胞增殖和凋亡检测 | 第27-28页 |
| 1.2.4.1 MTT法检测细胞增殖 | 第27-28页 |
| 1.2.4.2 流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第28页 |
| 1.2.5 不同盐酸米托蒽醌浓度下PrPC的表达量检测 | 第28页 |
| 2 结果与分析 | 第28-36页 |
| 2.1 米托蒽醌以剂量依赖方式抑制DF-1 细胞粘附 | 第28-30页 |
| 2.2 米托蒽醌以剂量依赖方式抑制DF-1 细胞侵袭 | 第30-31页 |
| 2.3 米托蒽醌以剂量和时间依赖方式抑制DF-1 细胞增殖 | 第31-32页 |
| 2.4 米托蒽醌以剂量依赖方式促进DF-1 细胞凋亡 | 第32-36页 |
| 2.5 不同米托蒽醌浓度下PrPC基因的表达量分析 | 第36页 |
| 3 讨论 | 第36-38页 |
| 结论 | 第38-39页 |
| 参考文献 | 第39-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 作者简介 | 第49-50页 |
| 导师简介 | 第50-51页 |
