| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 引言 | 第11-15页 |
| 第一部分 喹诺酮-吲哚酮衍生物抗肿瘤活性的筛选 | 第15-25页 |
| 1.1 实验材料 | 第15-17页 |
| 1.1.1 主要仪器 | 第15-16页 |
| 1.1.2 细胞株 | 第16页 |
| 1.1.3 药品与试剂 | 第16页 |
| 1.1.4 药品与试剂配制方法 | 第16-17页 |
| 1.1.5 喹诺酮-吲哚酮衍生物 | 第17页 |
| 1.2 实验方法 | 第17-18页 |
| 1.2.1 细胞培养 | 第17页 |
| 1.2.2 MTT法筛选20种喹诺酮-吲哚酮衍生物单体的抗肿瘤活性 | 第17-18页 |
| 1.2.3 数据处理和统计学分析 | 第18页 |
| 1.3 实验结果 | 第18-23页 |
| 1.4 讨论 | 第23页 |
| 1.5 小结 | 第23-25页 |
| 第二部分 QIC1的抗肿瘤活性及分子机制研究 | 第25-45页 |
| 2.1 实验材料 | 第26-30页 |
| 2.1.1 主要仪器 | 第26-27页 |
| 2.1.2 细胞株 | 第27页 |
| 2.1.3 药品与试剂 | 第27-28页 |
| 2.1.4 药品与试剂配制方法 | 第28-30页 |
| 2.1.5 QIC1及阳性对照苏尼替尼（Sunitinib） | 第30页 |
| 2.2 实验方法 | 第30-34页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第30页 |
| 2.2.2 MTT法检测QIC1的抗肿瘤活性 | 第30-31页 |
| 2.2.3 细胞周期检测 | 第31页 |
| 2.2.4 细胞凋亡检测 | 第31-32页 |
| 2.2.5 Western Blotting | 第32-34页 |
| 2.2.6 统计学分析 | 第34页 |
| 2.3 实验结果 | 第34-42页 |
| 2.3.1 QIC1对肿瘤细胞增殖的影响 | 第34-36页 |
| 2.3.2 QIC1对肿瘤细胞周期的影响 | 第36-37页 |
| 2.3.3 QIC1对肿瘤细胞凋亡的影响 | 第37-40页 |
| 2.3.4 QIC1对EGFR-STAT3-HKⅡ信号通路的影响 | 第40-42页 |
| 2.4 讨论 | 第42-44页 |
| 2.5 小结 | 第44-45页 |
| 第三部分 QIC1逆转人类乳腺癌MCF-7/DOX耐药细胞的耐药性 | 第45-57页 |
| 3.1 实验材料 | 第46-50页 |
| 3.1.1 主要仪器 | 第46页 |
| 3.1.2 细胞株 | 第46页 |
| 3.1.3 药品与试剂 | 第46-47页 |
| 3.1.4 药品与试剂配制方法 | 第47-50页 |
| 3.1.5 QIC1及阿霉素（DOX) | 第50页 |
| 3.2 实验方法 | 第50-53页 |
| 3.2.1 细胞培养 | 第50页 |
| 3.2.2 RT-PCR | 第50-51页 |
| 3.2.3 Western Blotting | 第51-52页 |
| 3.2.4 MTT法检测QIC1对耐药肿瘤细胞生长的影响 | 第52-53页 |
| 3.2.5 统计学分析 | 第53页 |
| 3.3 实验结果 | 第53-55页 |
| 3.4 讨论 | 第55-56页 |
| 3.5 小结 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-61页 |
| 英文缩略词表（ABBREVIATIONS AND ACRONYMS） | 第61-63页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第63-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
