| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 缩略词简表 | 第15-18页 |
| 第一章 绪论 | 第18-33页 |
| 1.1 引言 | 第18-19页 |
| 1.2 天然高分子明胶水凝胶的发展 | 第19-20页 |
| 1.3 GelMA水凝胶材料的发展 | 第20-28页 |
| 1.3.1 GelMA水凝胶简介 | 第20-21页 |
| 1.3.2 GelMA水凝胶的制备 | 第21-22页 |
| 1.3.3 GelMA水凝胶的优势 | 第22-23页 |
| 1.3.4 GelMA水凝胶的应用 | 第23-27页 |
| 1.3.4.1 组织血管化 | 第24页 |
| 1.3.4.2 心肌组织 | 第24-25页 |
| 1.3.4.3 骨修复 | 第25-26页 |
| 1.3.4.4 软骨组织 | 第26页 |
| 1.3.4.5 肝组织 | 第26-27页 |
| 1.3.5 GelMA水凝胶存在的缺点 | 第27-28页 |
| 1.4 3D打印技术 | 第28-30页 |
| 1.4.1 3D打印技术的简介 | 第28-29页 |
| 1.4.2 3D打印应用于GelMA水凝胶支架的构建 | 第29-30页 |
| 1.5 本论文的研究目的、意义及内容 | 第30-33页 |
| 第二章 “三臂”主客体超分子及其水凝胶的性能研究 | 第33-59页 |
| 2.1 引言 | 第33-34页 |
| 2.2 材料和方法 | 第34-42页 |
| 2.2.1 实验试剂与实验设备 | 第34-35页 |
| 2.2.2 “三臂”主客体超分子及其水凝胶的制备过程 | 第35-37页 |
| 2.2.2.1 主体分子(β-CD-AOI_2)的合成 | 第35-36页 |
| 2.2.2.2 客体分子(A-TEG-Ad)的合成 | 第36页 |
| 2.2.2.3 “三臂”主客体超分子(HGSM)的制备 | 第36-37页 |
| 2.2.2.4 主客体超分子水凝胶(HGSMGel)的合成 | 第37页 |
| 2.2.3 材料理化性质表征 | 第37-38页 |
| 2.2.3.1 一维核磁氢谱表征(~1HNMR) | 第37页 |
| 2.2.3.2 基质辅助激光解吸/电离飞行时间质谱 | 第37页 |
| 2.2.3.3 二维核磁氢谱表征 | 第37页 |
| 2.2.3.4 Zeta-电位粒径分析 | 第37-38页 |
| 2.2.4 吸水溶胀测试 | 第38页 |
| 2.2.5 表面形貌表征(SEM) | 第38页 |
| 2.2.6 流变学评价 | 第38-39页 |
| 2.2.7 力学性能测试 | 第39页 |
| 2.2.8 自愈合能力测试 | 第39页 |
| 2.2.9 体外生物相容性评价 | 第39-40页 |
| 2.2.9.1 细胞培养 | 第39-40页 |
| 2.2.9.2 细胞活死(Live/Dead)染色检测 | 第40页 |
| 2.2.9.3 CCK-8增殖检测 | 第40页 |
| 2.2.10 动物学实验评价 | 第40-42页 |
| 2.2.10.1 动物实验手术过程 | 第40-41页 |
| 2.2.10.2 水凝胶植入体石蜡包埋切片 | 第41页 |
| 2.2.10.3 H&E染色 | 第41-42页 |
| 2.2.11 数据分析 | 第42页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第42-57页 |
| 2.3.1 “三臂”主客体超分子的制备与表征 | 第42-47页 |
| 2.3.1.1 主体分子和客体分子的分析表征 | 第43-45页 |
| 2.3.1.2 主客体超分子的制备 | 第45-46页 |
| 2.3.1.3 主客体超分子的表征 | 第46-47页 |
| 2.3.2 形貌和溶胀分析 | 第47-49页 |
| 2.3.2.1 HGSMGel水凝胶的结构分析 | 第47-48页 |
| 2.3.2.2 形貌表征 | 第48页 |
| 2.3.2.3 吸水溶胀性能 | 第48-49页 |
| 2.3.3 流变学性质分析 | 第49-50页 |
| 2.3.4 力学性能分析 | 第50-53页 |
| 2.3.4.1 压缩性能分析 | 第50-52页 |
| 2.3.4.2 抗切割性能 | 第52页 |
| 2.3.4.3 力学性质分析 | 第52-53页 |
| 2.3.5 自愈合性能分析 | 第53-55页 |
| 2.3.6 体外生物相容性评价 | 第55-56页 |
| 2.3.7 动物学实验评价 | 第56-57页 |
| 2.4 本章小结 | 第57-59页 |
| 第三章 3D打印“三臂”主客体超分子增强型GelMA水凝胶的研究 | 第59-89页 |
| 3.1 引言 | 第59-60页 |
| 3.2 材料和方法 | 第60-68页 |
| 3.2.1 实验试剂与实验设备 | 第60-62页 |
| 3.2.2 主客体超分子增强型GelMA水凝胶的制备过程 | 第62-63页 |
| 3.2.2.1 β-CD-AOI2的合成 | 第62页 |
| 3.2.2.2 A-TEG-Ad的合成 | 第62页 |
| 3.2.2.3 主客体超分子(HGSM)的制备 | 第62页 |
| 3.2.2.4 GelMA的合成 | 第62-63页 |
| 3.2.2.5 主客体超分子增强型GelMA水凝胶的制备 | 第63页 |
| 3.2.2.6 GelMA和HAMA水凝胶的制备 | 第63页 |
| 3.2.3 3D打印HGGelMA水凝胶 | 第63-64页 |
| 3.2.4 吸水溶胀测试 | 第64页 |
| 3.2.5 流变学测试 | 第64-65页 |
| 3.2.6 表面形貌观察(SEM) | 第65页 |
| 3.2.7 力学性能测试 | 第65页 |
| 3.2.8 自愈合性能测试 | 第65-66页 |
| 3.2.9 可塑性测试 | 第66页 |
| 3.2.10 生物相容性评价 | 第66-67页 |
| 3.2.10.1 水凝胶支架材料处理 | 第66页 |
| 3.2.10.2 三维细胞培养 | 第66页 |
| 3.2.10.3 mBMSCs细胞在水凝胶支架上的增殖能力检测 | 第66-67页 |
| 3.2.10.4 mBMSCs细胞在水凝胶支架上的粘附能力检测 | 第67页 |
| 3.2.11 动物学实验评价 | 第67-68页 |
| 3.2.11.1 动物实验手术过程 | 第67-68页 |
| 3.2.11.2 支架植入体石蜡包埋切片 | 第68页 |
| 3.2.11.3 H&E染色 | 第68页 |
| 3.2.12 数据分析 | 第68页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第68-88页 |
| 3.3.1 HGGelMA水凝胶的制备 | 第68-70页 |
| 3.3.2 形貌表征分析 | 第70-71页 |
| 3.3.3 流变学性能分析 | 第71-74页 |
| 3.3.4 力学性能分析 | 第74-77页 |
| 3.3.4.1 抗压缩性能 | 第74-75页 |
| 3.3.4.2 拉伸性能 | 第75-76页 |
| 3.3.4.3 力学性能分析 | 第76-77页 |
| 3.3.5 可加工性 | 第77-78页 |
| 3.3.6 快速自愈合性能 | 第78-80页 |
| 3.3.7 3D打印过程 | 第80-83页 |
| 3.3.7.1 可打印性评价 | 第80-82页 |
| 3.3.7.2 3D打印水凝胶支架的表征 | 第82-83页 |
| 3.3.8 体外生物相容性学评价 | 第83-86页 |
| 3.3.8.1 细胞增殖 | 第83-85页 |
| 3.3.8.2 细胞粘附分析 | 第85-86页 |
| 3.3.9 动物学实验评价 | 第86-88页 |
| 3.4 本章小结 | 第88-89页 |
| 第四章 3D打印HAMA/GelMA抗菌水凝胶促血管化研究 | 第89-114页 |
| 4.1 引言 | 第89-90页 |
| 4.2 材料和方法 | 第90-98页 |
| 4.2.1 实验试剂与实验设备 | 第90-92页 |
| 4.2.2 打印墨水材料的制备与表征 | 第92-93页 |
| 4.2.2.1 GelMA的制备 | 第92页 |
| 4.2.2.2 HAMA的制备 | 第92页 |
| 4.2.2.3 3D打印墨水的配置方法 | 第92-93页 |
| 4.2.2.4 HAGelMA支架的3D打印过程 | 第93页 |
| 4.2.2.5 HAGelMA支架的层层自组装(LBL) | 第93页 |
| 4.2.3 材料的理化性质表征 | 第93-96页 |
| 4.2.3.1 ~1H-NMR表征测试 | 第93页 |
| 4.2.3.2 流变学性能测试 | 第93-94页 |
| 4.2.3.3 形貌结构测试 | 第94页 |
| 4.2.3.4 Micro-CT测试 | 第94页 |
| 4.2.3.5 力学测试 | 第94页 |
| 4.2.3.6 表面电位测试 | 第94页 |
| 4.2.3.7 X射线光电子能谱分析(XPS) | 第94-95页 |
| 4.2.3.8 抗菌测试 | 第95页 |
| 4.2.3.9 肝素释放曲线测试 | 第95-96页 |
| 4.2.3.10 体外降解测试 | 第96页 |
| 4.2.4 体外生物学评价 | 第96-97页 |
| 4.2.4.1 细胞实验准备 | 第96页 |
| 4.2.4.2 CCK-8测试 | 第96-97页 |
| 4.2.4.3 Live/dead染色 | 第97页 |
| 4.2.4.4 细胞粘附测试 | 第97页 |
| 4.2.5 动物学体内实验 | 第97-98页 |
| 4.2.5.1 裸鼠皮下包埋模型的构建 | 第97页 |
| 4.2.5.2 立体显微镜观察材料内部血管 | 第97页 |
| 4.2.5.3 水凝胶支架植入体石蜡包埋切片 | 第97页 |
| 4.2.5.4 H&E染色 | 第97-98页 |
| 4.2.5.5 植入体的三维血管造影 | 第98页 |
| 4.2.6 数据分析 | 第98页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第98-112页 |
| 4.3.1 3D打印墨水材料的表征 | 第98-99页 |
| 4.3.1.1 GelMA和HAMA的合成表征 | 第98页 |
| 4.3.1.2 HAGelMA打印墨水的流变学性能 | 第98-99页 |
| 4.3.2 打印水凝胶多孔支架的性能 | 第99-105页 |
| 4.3.2.1 水凝胶多孔支架的结构形貌 | 第100-101页 |
| 4.3.2.2 力学强度表征 | 第101页 |
| 4.3.2.3 LBL表面修饰表征分析 | 第101-104页 |
| 4.3.2.4 抗菌性能 | 第104-105页 |
| 4.3.2.5 降解测试 | 第105页 |
| 4.3.3 支架的体外生物相容性评价 | 第105-108页 |
| 4.3.3.1 细胞增殖与分布 | 第105-107页 |
| 4.3.3.2 细胞粘附 | 第107-108页 |
| 4.3.4 水凝胶多孔支架的动物学实验评价 | 第108-112页 |
| 4.3.4.1 水凝胶支架修复体的体内植入 | 第108-109页 |
| 4.3.4.2 支架孔隙组织血管分布 | 第109页 |
| 4.3.4.3 水凝胶支架植入后Micro-CT三维重建 | 第109-110页 |
| 4.3.4.4 H&E染色分析 | 第110-111页 |
| 4.3.4.5 支架内组织新生血管造影 | 第111-112页 |
| 4.4 本章小结 | 第112-114页 |
| 结论 | 第114-116页 |
| 论文创新性 | 第116-117页 |
| 参考文献 | 第117-130页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第130-132页 |
| 致谢 | 第132-133页 |
| 附件 | 第133页 |
