| 摘要 | 第6-7页 |
| abstract | 第7页 |
| 第一章 引言 | 第12-35页 |
| 1.1 小麦穗部结构及发育过程 | 第12-13页 |
| 1.2 模式植物花序发育的基因调控 | 第13-21页 |
| 1.2.1 小穗分生组织形成的基因调控 | 第13-16页 |
| 1.2.2 小花分生组织形成的基因调控 | 第16-17页 |
| 1.2.3 花器官分化和发育的基因调控 | 第17-20页 |
| 1.2.4 激素相关基因在花序和花器官发育中的作用 | 第20-21页 |
| 1.3 小麦幼穗发育的研究进展 | 第21-22页 |
| 1.4 MicroRNA在植物发育过程中的调控作用 | 第22-27页 |
| 1.4.1 植物miRNA的合成、加工和基因沉默 | 第22-24页 |
| 1.4.2 MicroRNA在植物发育过程中的作用 | 第24-27页 |
| 1.5 植物ARGONAUTE蛋白在发育中的作用 | 第27-31页 |
| 1.5.1 AGO蛋白的起源和进化 | 第27-28页 |
| 1.5.2 植物AGO蛋白的结构与功能 | 第28-30页 |
| 1.5.3 植物AGO1的生物学功能 | 第30-31页 |
| 1.6 小麦及其祖先种基因组测序的发展 | 第31-33页 |
| 1.7 小麦转录组测序的研究进展 | 第33页 |
| 1.8 研究目的和意义 | 第33-35页 |
| 第二章 普通小麦幼穗发育关键阶段的转录组分析 | 第35-57页 |
| 2.1 实验材料和方法 | 第35-42页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第35页 |
| 2.1.2 光学显微镜及扫描电子显微镜观察 | 第35-36页 |
| 2.1.3 总RNA的提取 | 第36页 |
| 2.1.4 DGE文库构建及数据分析 | 第36-38页 |
| 2.1.5 实时定量PCR检测 | 第38-39页 |
| 2.1.6 原位杂交 | 第39-42页 |
| 2.2 实验结果 | 第42-54页 |
| 2.2.1 小麦幼穗转录组分析概况 | 第42-46页 |
| 2.2.2 差异表达基因分析 | 第46-49页 |
| 2.2.3 差异基因验证 | 第49页 |
| 2.2.4 阶段特异表达基因 | 第49-54页 |
| 2.3 讨论 | 第54-57页 |
| 2.3.1 小麦小穗发育关键基因的功能比较 | 第55-56页 |
| 2.3.2 小麦花器官建成基因的功能比较 | 第56页 |
| 2.3.3 sRNA可能参与小麦幼穗发育 | 第56-57页 |
| 第三章 普通小麦幼穗发育关键阶段的miRNA分析 | 第57-68页 |
| 3.1 实验材料和方法 | 第57-61页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第57页 |
| 3.1.2 RNA提取 | 第57页 |
| 3.1.3 小分子RNA测序 | 第57-58页 |
| 3.1.4 miRNA表达分析 | 第58页 |
| 3.1.5 RNA连接酶介导的5’RACE(RNAligase-mediated5’RACE) | 第58-61页 |
| 3.2 实验结果 | 第61-67页 |
| 3.2.1 小分子RNA测序概况 | 第61页 |
| 3.2.2 差异表达的miRNA | 第61-65页 |
| 3.2.3 miRNA切割靶基因 | 第65-67页 |
| 3.3 讨论 | 第67-68页 |
| 第四章 小麦AGO1d在花药发育中的功能鉴定 | 第68-75页 |
| 4.1 实验材料和方法 | 第68-70页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第68页 |
| 4.1.2 实时定量PCR检测 | 第68页 |
| 4.1.3 原位杂交 | 第68页 |
| 4.1.4 DNA提取 | 第68-69页 |
| 4.1.5 突变位点检测 | 第69页 |
| 4.1.6 突变体表型分析 | 第69页 |
| 4.1.7 进化树构建 | 第69-70页 |
| 4.2 实验结果 | 第70-74页 |
| 4.2.1 AGO1d在AM时期特异高表达 | 第70-71页 |
| 4.2.2 AGO1d突变引起四倍体小麦育性降低 | 第71-74页 |
| 4.3 讨论 | 第74-75页 |
| 第五章 全文结论 | 第75-76页 |
| 5.1 普通小麦幼穗发育关键阶段的转录组分析 | 第75页 |
| 5.2 普通小麦幼穗发育关键阶段的miRNA分析 | 第75页 |
| 5.3 小麦AGO1d在花药发育中的功能鉴定 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-91页 |
| 附录 | 第91-102页 |
| 致谢 | 第102-103页 |
| 作者简历 | 第103页 |
