摘要 | 第6-8页 |
ABSTRACT | 第8-9页 |
第一章 绪论 | 第10-16页 |
1.1 鱼腥草特性简介 | 第10页 |
1.2 鱼腥草中的化学成分综述 | 第10-11页 |
1.2.1 挥发油 | 第10页 |
1.2.2 黄酮 | 第10-11页 |
1.2.3 生物碱 | 第11页 |
1.2.4 其他类成分 | 第11页 |
1.3 鱼腥草抗肿瘤作用研究综述 | 第11-14页 |
1.3.1 鱼腥草制剂及组方抗肿瘤作用 | 第11-12页 |
1.3.2 鱼腥草有效部位及有效成分抗肿瘤作用 | 第12-13页 |
1.3.3 鱼腥草抗肿瘤作用机制 | 第13-14页 |
1.4 课题研究的目的和意义 | 第14-16页 |
第二章 HCT-A组分的提取和纯化 | 第16-26页 |
2.1 实验药材 | 第16页 |
2.2 实验仪器 | 第16页 |
2.3 实验试剂 | 第16页 |
2.4 实验方法 | 第16-19页 |
2.4.1 HCT-A的提取 | 第16页 |
2.4.2 测定波长的选择和标准曲线的绘制 | 第16-17页 |
2.4.3 HCT-A纯化工艺条件研究 | 第17-19页 |
2.4.4 HCT-A纯化工艺验证 | 第19页 |
2.5 实验结果 | 第19-25页 |
2.5.1 上样液浓度考察结果 | 第19-20页 |
2.5.2 上样液pH的考察结果 | 第20页 |
2.5.3 上样流速对吸附的影响结果 | 第20-21页 |
2.5.4 吸附时间的影响结果 | 第21页 |
2.5.5 不同浓度洗脱剂的考察 | 第21-22页 |
2.5.6 洗脱速度的考察结果 | 第22-23页 |
2.5.7 水洗体积的确定 | 第23页 |
2.5.8 洗脱剂用量的考察结果 | 第23-24页 |
2.5.9 HCT-A纯化工艺验证 | 第24-25页 |
2.6 讨论 | 第25-26页 |
第三章 HCT-A抑制人肺癌细胞生长及诱导凋亡实验 | 第26-38页 |
3.1 实验材料 | 第26-27页 |
3.1.1 细胞株 | 第26页 |
3.1.2 主要仪器 | 第26页 |
3.1.3 实验试剂及试剂盒 | 第26-27页 |
3.1.4 实验中溶液配制方法 | 第27页 |
3.2 实验方法 | 第27-29页 |
3.2.1 细胞培养 | 第27页 |
3.2.2 MTS实验 | 第27-28页 |
3.2.3 细胞形态观察 | 第28页 |
3.2.4 Hoechst 33258染色 | 第28页 |
3.2.5 流式细胞仪Annexin V/PI双染检测凋亡 | 第28页 |
3.2.6 统计学分析 | 第28-29页 |
3.3 实验结果 | 第29-36页 |
3.3.1 MTS法考察HCT-A对5种肺癌细胞增殖的抑制作用 | 第29-30页 |
3.3.2 形态学观察 | 第30-32页 |
3.3.3 Hoechst 33258染色观察HCT-A对肺癌细胞细胞核的影响 | 第32-33页 |
3.3.4 流式细胞仪Annexin V/PI双染检测凋亡 | 第33-36页 |
3.4 实验讨论 | 第36-38页 |
第四章 HCT-A抑制人肺癌细胞生长及诱导凋亡的机制研究 | 第38-47页 |
4.1 实验材料 | 第38-39页 |
4.1.1 主要仪器 | 第38页 |
4.1.2 实验试剂及试剂盒 | 第38-39页 |
4.1.3 实验中所用溶液配制方法 | 第39页 |
4.2 实验方法 | 第39-41页 |
4.2.1 流式细胞仪检测细胞周期 | 第39-40页 |
4.2.2 蛋白质免疫印迹法(Western Blot) | 第40页 |
4.2.3 Caspase活性检测 | 第40-41页 |
4.2.4 统计学分析 | 第41页 |
4.3 实验结果 | 第41-45页 |
4.3.1 HCT-A对肺癌细胞的细胞周期的影响 | 第41-43页 |
4.3.2 Western Blot检测与凋亡相关基因的蛋白表达变化 | 第43-44页 |
4.3.3 Caspase级联反应在HCT-A诱导A549细胞凋亡中作用的检测。 | 第44-45页 |
4.4 实验讨论 | 第45-47页 |
第五章 总结与展望 | 第47-48页 |
5.1 总结 | 第47页 |
5.2 展望 | 第47-48页 |
参考文献 | 第48-54页 |
攻读硕士期间发表的论文 | 第54-55页 |
致谢 | 第55页 |