| 中文摘要 | 第1-12页 |
| ABSTRACT | 第12-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-22页 |
| ·核糖体蛋白概述 | 第15-16页 |
| ·核糖体的结构与生物发生 | 第15页 |
| ·核糖体蛋白的分类与功能 | 第15-16页 |
| ·核糖体蛋白L11的研究进展 | 第16-20页 |
| ·核糖体蛋白L11概述 | 第16页 |
| ·RPL11参与HDM2-p53反馈调节 | 第16-18页 |
| ·RPL11对c-Myc的负反馈调节 | 第18页 |
| ·RPL11与肿瘤抑制 | 第18-20页 |
| ·实验材料及本课题的意义 | 第20-22页 |
| ·八肋游仆虫 | 第20页 |
| ·本研究的目的与意义 | 第20-22页 |
| 第二章 八肋游仆虫核糖体蛋白L11的定位分析 | 第22-28页 |
| ·材料 | 第22页 |
| ·细胞与质粒 | 第22页 |
| ·工具酶及试剂 | 第22页 |
| ·方法 | 第22-24页 |
| ·重组表达质粒pEGFP-N1-EoRPL11的构建 | 第22-23页 |
| ·转染级质粒的制备 | 第23页 |
| ·细胞培养 | 第23页 |
| ·质粒转染 | 第23页 |
| ·RT-PCR分析 | 第23页 |
| ·Western blot分析 | 第23-24页 |
| ·观察EoRPL11的定位 | 第24页 |
| ·结果 | 第24-27页 |
| ·重组质粒pEGFP-N1-EoRPL11的构建 | 第24页 |
| ·EoRPL11的表达鉴定 | 第24-26页 |
| ·EoRPL11的定位 | 第26-27页 |
| ·讨论 | 第27-28页 |
| 第三章 EORPL11的过表达对HEK293T细胞蛋白质翻译的影响 | 第28-34页 |
| ·材料 | 第28页 |
| ·细胞与质粒 | 第28页 |
| ·主要试剂 | 第28页 |
| ·寡聚核苷酸 | 第28页 |
| ·方法 | 第28-29页 |
| ·重组表达质粒pCMV-Myc-EoRPL11和pCMV-Myc-GST的构建 | 第28-29页 |
| ·转染级质粒的制备 | 第29页 |
| ·RT-PCR和Western blot检测蛋白的表达 | 第29页 |
| ·报告基因活性的测定 | 第29页 |
| ·实时定量PCR分析 | 第29页 |
| ·结果 | 第29-33页 |
| ·重组质粒pCMV-Myc-EoRPL11和pCMV-Myc-GST的构建 | 第29-30页 |
| ·重组蛋白在HEK293T细胞中的表达鉴定 | 第30-31页 |
| ·过表达EoRPL11对荧光素酶合成的影响 | 第31-32页 |
| ·荧光素酶mRNA的定量分析 | 第32-33页 |
| ·讨论 | 第33-34页 |
| 第四章 EoRPL11的过表达对细胞增殖及周期的影响 | 第34-37页 |
| ·材料 | 第34页 |
| ·方法 | 第34页 |
| ·MTT法检测HEK293T细胞增殖 | 第34页 |
| ·流式细胞术检测HEK293T细胞周期 | 第34页 |
| ·结果 | 第34-36页 |
| ·EoRPL11的过表达对HEK293T细胞增殖的影响 | 第34-36页 |
| ·EoRPL11的过表达对HEK293T细胞周期的影响 | 第36页 |
| ·讨论 | 第36-37页 |
| 第五章 HDM2的克隆与序列分析 | 第37-42页 |
| ·材料 | 第37页 |
| ·方法 | 第37-38页 |
| ·细胞总RNA提取及cDNA合成 | 第37页 |
| ·HDM2基因的克隆与序列测定 | 第37页 |
| ·HDM2基因序列分析 | 第37-38页 |
| ·结果 | 第38-40页 |
| ·HDM2基因的PCR扩增 | 第38页 |
| ·HDM2基因的克隆及测序分析 | 第38-39页 |
| ·HDM2变异体基因序列分析 | 第39-40页 |
| ·讨论 | 第40-42页 |
| 小结与展望 | 第42-44页 |
| 参考文献 | 第44-48页 |
| 附录1 略语表 | 第48-49页 |
| 附录2 主要试剂配制 | 第49-51页 |
| 附录3 主要仪器设备 | 第51-52页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第52-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
| 个人简介及联系方式 | 第54-56页 |
