| 符号说明 | 第1-8页 |
| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-13页 |
| 1 引言 | 第13-29页 |
| ·真菌多糖研究概述 | 第13-21页 |
| ·在生物学中的重要地位 | 第13页 |
| ·真菌多糖的提取 | 第13页 |
| ·真菌多糖的分离纯化 | 第13-14页 |
| ·真菌多糖的纯度测定 | 第14-15页 |
| ·真菌多糖的结构鉴定 | 第15页 |
| ·真菌多糖的生物学功能 | 第15-20页 |
| ·多糖的构效关系 | 第20-21页 |
| ·真菌硒多糖研究概述 | 第21-24页 |
| ·硒多糖的来源 | 第22页 |
| ·硒多糖的提取及分离纯化 | 第22页 |
| ·硒多糖的组成结构 | 第22-23页 |
| ·硒多糖的生物活性 | 第23-24页 |
| ·羊肚菌多糖研究概述 | 第24-28页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第28-29页 |
| 2 材料与方法 | 第29-42页 |
| ·供试菌种 | 第29页 |
| ·培养基 | 第29页 |
| ·主要仪器设备及试剂 | 第29-30页 |
| ·主要仪器设备 | 第29页 |
| ·主要试剂 | 第29-30页 |
| ·实验方法 | 第30-42页 |
| ·羊肚菌的液体深层培养 | 第30-31页 |
| ·富硒羊肚菌液体深层培养 | 第31页 |
| ·菌丝体生物量的测定 | 第31页 |
| ·羊肚菌多糖（硒多糖）的提取及含量测定 | 第31-32页 |
| ·多糖（硒多糖）的分离 | 第32-34页 |
| ·胞外多糖的提取 | 第34-35页 |
| ·多糖（硒多糖）体外抗氧化活性 | 第35-36页 |
| ·多糖的（硒多糖）体内抗氧化活性 | 第36-42页 |
| 3 结果与分析 | 第42-72页 |
| ·EPS 提取的提取优化 | 第42-51页 |
| ·单因素试验 | 第42-46页 |
| ·PB 试验 | 第46-47页 |
| ·响应面法优化 | 第47-51页 |
| ·EPS 的体外抗氧化活性 | 第51-54页 |
| ·EPS 对超氧阴离子自由基0_2~--清除作用 | 第51-52页 |
| ·EPS 对羟基自由基-OH 清除作用 | 第52-53页 |
| ·EPS 对DPPH 自由基的清除作用 | 第53页 |
| ·EPS 还原能力测定 | 第53-54页 |
| ·硒含量测定 | 第54-55页 |
| ·Se-MIP 和Se-MIP-1 的体外抗氧化活性 | 第55-58页 |
| ·清除超氧阴离子自由基0_~-2-作用 | 第55页 |
| ·清除羟基自由基·OH 作用 | 第55-56页 |
| ·清除DPPH 自由基的作用 | 第56-57页 |
| ·还原力测定 | 第57-58页 |
| ·EPS 的体内抗氧化活性 | 第58-61页 |
| ·EPS 对小鼠组织和全血SOD 活性的影响 | 第58-59页 |
| ·EPS 对小鼠组织和全血GSH-Px 活性的影响 | 第59-60页 |
| ·EPS 对小鼠组织和全血MDA 含量的影响 | 第60-61页 |
| ·Se-MIP 和Se-MIP-1 的体内抗氧化活性 | 第61-72页 |
| ·Se-MIP Se-MIP-1 对小鼠组织和全血SOD 活性的影响 | 第61-64页 |
| ·Se-MIP Se-MIP-1 对小鼠组织和全血GSH-Px 活性的影响 | 第64-67页 |
| ·Se-MIP Se-MIP-1 对小鼠组织和全血MDA 含量的影响 | 第67-72页 |
| 4 讨论 | 第72-74页 |
| ·EPS 的提取条件 | 第72页 |
| ·羊肚菌对微量元素硒的富集 | 第72页 |
| ·多糖含量的测定 | 第72页 |
| ·多糖的分离 | 第72-73页 |
| ·抗氧化能力 | 第73页 |
| ·尚待进一步开展的工作 | 第73-74页 |
| 5 结论 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-84页 |
| 致谢 | 第84-85页 |
| 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第85页 |
