| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 英文缩略语 | 第11-18页 |
| 第一部分：自身免疫甲状腺炎小鼠动物模型血清PDIA3抗体表达分析 | 第18-34页 |
| 1 前言 | 第18-19页 |
| 2 材料与方法 | 第19-27页 |
| 2.1 主要仪器和试剂 | 第19-22页 |
| 2.1.1 实验仪器 | 第19-20页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第20-22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-27页 |
| 2.2.1 高碘诱导SAT | 第22页 |
| 2.2.2 制备小鼠源甲状腺球蛋白(mTg) | 第22页 |
| 2.2.3 mTg免疫诱导EAT | 第22-23页 |
| 2.2.4 标本收集与处理 | 第23页 |
| 2.2.5 甲状腺HE染色 | 第23页 |
| 2.2.6 小鼠血清TgAb和PDIA3Ab水平检测 | 第23-24页 |
| 2.2.7 Westernblotting蛋白免疫印迹 | 第24-27页 |
| 2.2.8 统计学处理 | 第27页 |
| 3 结果 | 第27-31页 |
| 3.1 小鼠甲状腺HE染色及血清TgAb总IgG的水平 | 第27-29页 |
| 3.1.1 碘诱导SAT造模检测结果 | 第27-28页 |
| 3.1.2 mTg免疫诱导EAT造模检测结果 | 第28-29页 |
| 3.2 小鼠血清PDIA3总IgG及亚型表达的检测结果 | 第29-31页 |
| 3.2.1 SAT组小鼠血清PDIA3总IgG检测结果 | 第29页 |
| 3.2.2 EAT组小鼠血清PDIA3总IgG及亚型表达的检测结果 | 第29-31页 |
| 4 讨论 | 第31-33页 |
| 5 结论 | 第33-34页 |
| 第二部分：针对PDIA3的自身免疫反应对甲状腺的影响 | 第34-58页 |
| 1 前言 | 第34页 |
| 2 材料与方法 | 第34-46页 |
| 2.1 主要试剂和材料 | 第34-37页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第34-35页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第35-36页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第36-37页 |
| 2.2 实验方法 | 第37-46页 |
| 2.2.1 实验动物的分组和处理 | 第37-38页 |
| 2.2.2 标本收集与处理 | 第38页 |
| 2.2.3 WeaternBlot蛋白免疫印迹 | 第38页 |
| 2.2.4 小鼠血清PDIA3Ab和TgAb水平的检测 | 第38-39页 |
| 2.2.5 小鼠甲状腺HE染色 | 第39页 |
| 2.2.6 正常小鼠甲状腺PDIA3免疫组织化学染色 | 第39-40页 |
| 2.2.7 小鼠甲状腺免疫荧光染色 | 第40-41页 |
| 2.2.8 Real-TimePCR检测细胞因子mRNA的表达情况 | 第41-44页 |
| 2.2.9 小鼠血清TT4和TSH的测定 | 第44-46页 |
| 2.2.10 统计学处理 | 第46页 |
| 3 结果 | 第46-55页 |
| 3.1 正常小鼠甲状腺中PDIA3蛋白的表达和细胞定位 | 第46-47页 |
| 3.2 小鼠血清PDIA3Ab总IgG的检测结果 | 第47-48页 |
| 3.3 小鼠甲状腺功能检测结果 | 第48-49页 |
| 3.4 小鼠甲状腺HE染色及炎症评分 | 第49页 |
| 3.5 小鼠血清TgAb总IgG水平的检测结果 | 第49-50页 |
| 3.6 小鼠甲状腺组织中CleavedCaspase-3的表达 | 第50-51页 |
| 3.7 甲状腺组织相关免疫荧光染色结果 | 第51-53页 |
| 3.8 小鼠血清PDIA3AbIgG亚型水平的检测结果 | 第53-54页 |
| 3.9 小鼠脾组织相关细胞因子mRNA表达的检测结果 | 第54-55页 |
| 4 讨论 | 第55-57页 |
| 5 结论 | 第57-58页 |
| 第三部分：针对PDIA3的自身免疫反应对脑的影响 | 第58-78页 |
| 1 前言 | 第58-59页 |
| 2 材料与方法 | 第59-65页 |
| 2.1 材料与试剂 | 第59-62页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第59页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第59-60页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第60-62页 |
| 2.2 实验方法 | 第62-65页 |
| 2.2.1 实验动物的分组和处理 | 第62页 |
| 2.2.2 标本收集与处理 | 第62页 |
| 2.2.3 WeaternBlot蛋白免疫印迹 | 第62页 |
| 2.2.4 脑组织免疫荧光染色 | 第62-63页 |
| 2.2.5 Morriswatermaze水迷宫(MWM) | 第63-64页 |
| 2.2.6 离体LTP(Long-termpotentiation)测试 | 第64-65页 |
| 2.2.7 透射扫描电子显微镜观察脑微血管的超微结构 | 第65页 |
| 2.2.8 蛋白质组微阵列试验 | 第65页 |
| 2.2.9 统计学处理 | 第65页 |
| 3 结果 | 第65-75页 |
| 3.1 正常小鼠脑组织中PDIA3蛋白的表达和细胞定位 | 第65-67页 |
| 3.2 Morris水迷宫实验结果 | 第67-69页 |
| 3.3 离体长时程增强(Long-termPotentiation)实验结果 | 第69页 |
| 3.4 小鼠脑组织免疫荧光的检测结果 | 第69-71页 |
| 3.5 透射扫描电子显微镜观察皮质和海马微血管及其周围超微结构 | 第71-72页 |
| 3.6 小鼠脑组织中星型胶质细胞活化的检测结果 | 第72-73页 |
| 3.7 小鼠脑组织中细胞因子表达水平的检测结果 | 第73-74页 |
| 3.8 小鼠脑组织内细胞凋亡情况 | 第74-75页 |
| 4 讨论 | 第75-77页 |
| 5 结论 | 第77-78页 |
| 本研究创新性自我评价 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-86页 |
| 综述 | 第86-93页 |
| 参考文献 | 第89-93页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第93-95页 |
| 致谢 | 第95-96页 |
| 个人简历 | 第96页 |
