| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 第一章 绪论 | 第8-22页 |
| 1.1 引言 | 第8-9页 |
| 1.2 分子印迹技术 | 第9-12页 |
| 1.2.1 分子印迹技术的概述 | 第9-10页 |
| 1.2.2 分子印迹聚合物的合成及分类 | 第10-11页 |
| 1.2.3 分子印迹聚合物的制备方法 | 第11-12页 |
| 1.3 样品前处理技术 | 第12-14页 |
| 1.3.1 固相萃取技术 | 第12-13页 |
| 1.3.2 分散液液微萃取技术 | 第13-14页 |
| 1.4 低共熔溶剂 | 第14-21页 |
| 1.4.1 低共熔溶剂的分类 | 第15页 |
| 1.4.2 低共熔溶剂的性质 | 第15-17页 |
| 1.4.3 低共熔溶剂的合成机理和制备方法 | 第17-18页 |
| 1.4.4 低共熔溶剂的合成方法 | 第18-19页 |
| 1.4.5 低共熔溶剂的应用 | 第19-21页 |
| 1.5 本论文研究内容 | 第21-22页 |
| 第二章 杂化分子印迹聚合物的合成及在纯化绿茶中的茶碱的应用 | 第22-33页 |
| 2.1 引言 | 第22-23页 |
| 2.2 实验部分 | 第23-26页 |
| 2.2.1 试剂与仪器 | 第23-24页 |
| 2.2.2 高效液相的色谱条件和标准溶液的配置 | 第24页 |
| 2.2.3 杂化分子印迹聚合物的合成 | 第24-25页 |
| 2.2.4 聚合物的表征 | 第25页 |
| 2.2.5 纯化绿茶样品 | 第25-26页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第26-32页 |
| 2.3.1 色谱条件的优化 | 第26页 |
| 2.3.2 HMIPs的合成分析 | 第26-27页 |
| 2.3.3 HMIPs的表征分析 | 第27-28页 |
| 2.3.4 评估聚合物的选择性吸附能力 | 第28-29页 |
| 2.3.5 优化HMIPs-SPE过程 | 第29-30页 |
| 2.3.6 方法学评价 | 第30-31页 |
| 2.3.7 纯化绿茶中的THP | 第31-32页 |
| 2.4 本章小结 | 第32-33页 |
| 第三章 杂化双模板分子印迹聚合物用于同时纯化绿茶中的茶碱和槲皮素 | 第33-46页 |
| 3.1 引言 | 第33-34页 |
| 3.2 实验部分 | 第34-37页 |
| 3.2.1 试剂与仪器 | 第34页 |
| 3.2.2 高效液相色谱条件和标准溶液的配置 | 第34页 |
| 3.2.3 杂化双模板分子印迹聚合物的合成 | 第34-35页 |
| 3.2.4 聚合物的表征分析 | 第35-36页 |
| 3.2.5 纯化绿茶样品 | 第36-37页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第37-45页 |
| 3.3.1 色谱条件的优化 | 第37页 |
| 3.3.2 HDMIPs的合成分析 | 第37-38页 |
| 3.3.3 HMIPs和HDMIPs的表征分析 | 第38-39页 |
| 3.3.4 评估聚合物的选择性吸附能力 | 第39-42页 |
| 3.3.5 HDMIPs-SPE过程的优化 | 第42-44页 |
| 3.3.6 方法学评价 | 第44-45页 |
| 3.3.7 纯化绿茶中的THP和Qu | 第45页 |
| 3.4 本章小结 | 第45-46页 |
| 第四章 疏水性低共熔溶剂合成及在分离检测环境水样中磺胺类抗生素的应用 | 第46-59页 |
| 4.1 引言 | 第46-47页 |
| 4.2 实验部分 | 第47-49页 |
| 4.2.1 试剂与仪器 | 第47页 |
| 4.2.2 高效液相色谱条件和标准溶液的配置 | 第47页 |
| 4.2.3 DESs的合成 | 第47-48页 |
| 4.2.4 DESs的表征 | 第48页 |
| 4.2.5 环境水样品的预处理 | 第48页 |
| 4.2.6 DESs-DLLME过程的优化 | 第48-49页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第49-58页 |
| 4.3.1 DESs的表征 | 第49-53页 |
| 4.3.2 分散液液微萃取过程的优化 | 第53-55页 |
| 4.3.3 方法验证 | 第55-57页 |
| 4.3.4 对实际样品的分析应用 | 第57-58页 |
| 4.3.5 与其他分析方法的比较 | 第58页 |
| 4.4 本章小结 | 第58-59页 |
| 第五章 结论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-70页 |
| 发表的论文和科研情况 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71页 |
