| 摘要 | 第3-4页 |
| ABSTRACT | 第4-5页 |
| 1 绪论 | 第9-20页 |
| 1.1 糖尿病与糖调节受损 | 第9-12页 |
| 1.1.1 糖尿病简介 | 第9页 |
| 1.1.2 糖尿病预防的必要性 | 第9页 |
| 1.1.3 糖调节受损及其诊断标准 | 第9-10页 |
| 1.1.4 糖调节受损的代谢特征 | 第10-11页 |
| 1.1.5 糖调节受损的干预途径 | 第11-12页 |
| 1.2 实验型糖尿病动物模型的建立方法 | 第12-13页 |
| 1.2.1 饮食诱导 | 第12-13页 |
| 1.2.2 化学药物诱导 | 第13页 |
| 1.2.3 饮食联合化学药物诱导 | 第13页 |
| 1.3 燕麦Β-葡聚糖概述 | 第13-18页 |
| 1.3.1 燕麦简介 | 第13-14页 |
| 1.3.2 燕麦β-葡聚糖的结构特征 | 第14-15页 |
| 1.3.3 燕麦β-葡聚糖的理化性质 | 第15-16页 |
| 1.3.4 燕麦β-葡聚糖的生理功能 | 第16-17页 |
| 1.3.5 燕麦β-葡聚糖在食品行业中的应用 | 第17-18页 |
| 1.4 课题研究的意义及具体工作 | 第18-20页 |
| 1.4.1 课题研究意义 | 第18页 |
| 1.4.2 主要研究内容 | 第18-20页 |
| 2 饮食诱导糖调节受损小鼠模型的建立 | 第20-26页 |
| 2.1 引言 | 第20页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第20-22页 |
| 2.2.1 试验动物 | 第20页 |
| 2.2.2 普通饲料 | 第20-21页 |
| 2.2.3 高糖高脂饮食配方 | 第21页 |
| 2.2.4 试验材料及试剂 | 第21-22页 |
| 2.2.5 主要仪器及设备 | 第22页 |
| 2.3 试验方法 | 第22-23页 |
| 2.3.1 糖调节受损小鼠模型的建立 | 第22页 |
| 2.3.2 模型评价标准 | 第22-23页 |
| 2.3.3 数据处理 | 第23页 |
| 2.4 结果与分析 | 第23-24页 |
| 2.4.1 高糖高脂饮食诱导后小鼠的空腹血糖及糖耐量水平 | 第23-24页 |
| 2.5 讨论 | 第24-25页 |
| 2.6 本章小结 | 第25-26页 |
| 3 燕麦Β-葡聚糖对糖调节受损小鼠降血糖作用的研究 | 第26-42页 |
| 3.1 引言 | 第26页 |
| 3.2 材料与仪器 | 第26-27页 |
| 3.2.1 材料 | 第26页 |
| 3.2.2 普通饲料、高糖高脂饮食配方 | 第26页 |
| 3.2.3 主要材料、试剂及仪器 | 第26-27页 |
| 3.3 试验方法 | 第27-30页 |
| 3.3.1 试验分组及处理 | 第27-28页 |
| 3.3.2 血糖调节试验 | 第28页 |
| 3.3.3 血糖调节试验指标的测定 | 第28-30页 |
| 3.3.4 数据处理 | 第30页 |
| 3.4 结果与分析 | 第30-37页 |
| 3.4.1 β-葡聚糖对糖调节受损小鼠体重、脏器系数的影响 | 第30页 |
| 3.4.2 β-葡聚糖对糖调节受损小鼠糖耐量的影响 | 第30-33页 |
| 3.4.3 β-葡聚糖对糖调节受损小鼠胰岛素耐量的影响 | 第33-34页 |
| 3.4.4 β-葡聚糖对糖调节受损小鼠胰岛素抵抗指数的影响 | 第34页 |
| 3.4.5 β-葡聚糖对糖调节受损小鼠肝脏葡萄糖糖激酶活力的影响 | 第34-35页 |
| 3.4.6 β-葡聚糖对糖调节受损小鼠肝糖原的影响 | 第35-36页 |
| 3.4.7 β-葡聚糖对糖调节受损小鼠肝组织病理形态学的影响 | 第36-37页 |
| 3.5 讨论 | 第37-41页 |
| 3.5.1 燕麦β-葡聚糖对糖调节受损小鼠糖代谢的影响 | 第38-40页 |
| 3.5.2 燕麦β-葡聚糖对模型小鼠肝脏脂肪沉积的影响 | 第40-41页 |
| 3.6 本章小结 | 第41-42页 |
| 4 结论与展望 | 第42-44页 |
| 4.1 结论 | 第42页 |
| 4.2 展望 | 第42-44页 |
| 致谢 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-52页 |
| 附录 | 第52页 |
| A 作者在攻读学位期间发表的论文目录 | 第52页 |
